Комплексные поставки запорной арматуры
и деталей трубопроводов →

Тел: +7 (3522) 55-48-26

Дезинфекция акриловых ванн


Чем мыть акриловую ванну, проведение дезинфекции

Чем мыть акриловую ванну? В настоящее время акриловые ванны становятся все более популярными. Они намного легче чугунных, имеют высокую прочность, надежность, эстетичный внешний вид.

Каждая хозяйка стремится содержать ванну в чистоте. Это не так просто, потому что ввиду высокой влажности в помещении на поверхности иногда появляются ржавые пятна и водяной камень. Их устранить можно только особыми чистящими веществами.

Чем чистить акриловую ванну?

Необходимо приготовить:

  • мягкую губку
  • мыло или моющее средство для акриловых поверхностей

Мыть акриловую ванну нужно следующим образом:

  1. После применения ванны надо ее поверхность намочить теплой водой.
  2. Вытереть ее мягкой губкой, на которую наносят мыло или моющее вещество для акрила.
  3. После тщательной очистки моющим веществом нужно хорошо промыть ее теплой водой из душа.
  4. Вытереть мягкой тряпкой.

Чтобы изделие надолго сохраняло блеск и отличный внешний вид, необходимо эти мероприятия проводить каждый день.

Намного легче не допустить проблему, чем исправлять ситуацию. Поэтому перед чисткой ванны необходимо добросовестно проштудировать инструкцию по эксплуатации ванны. Обычно изготовители советуют, какие средства ухода нужно применять.

В этом случае не надо долго выбирать средство для чистки, и изделию не будет причинен вред. Моющие вещества для чистки акрила можно купить в торговых предприятиях, продающих ванны или специализирующихся на реализации моющих веществ.

Особые правила чистки акриловых ванн

Эти способы для мытья акриловых поверхностей запомнить не трудно. На сегодняшний день разработаны специальные химические составы для мытья акрила. Они позволяют качественно устранять с акриловой поверхности самые трудноудаляемые загрязнения.

Чем чистить акриловую ванну?

  1. Надо сначала почистить мягкой губкой, смоченной соответствующим моющим веществом.
  2. Затем помыть теплой водой.
  3. Нужно нанести на пятно моющее средство для чистки особых загрязнений. После этого оставить его на непродолжительное время.
  4. Смыть моющий состав теплой водой.
  5. Хорошо промыть поверхность.

Если пятно не очистилось после этих мероприятий, то можно выполнить реставрацию ванны, применив жидкий акрил. Он позволит аккуратно без повреждений затереть загрязнения.

Ни в коем случае нельзя использовать для чистки акриловых ванн абразивные чистящие вещества. Они могут поцарапать гладкую поверхность.

Нельзя использовать для чистки ацетон, бензин, вещества, которые содержат аммиак, кислоту или хлор. Они разъедают поверхность, могут изменить цвет материала.

Подручные средства для чистки пятен

При отсутствии специального моющего вещества можно использовать подручные средства.

Пятна от ржавчины удаляют соком лимона или столовым уксусом.

Для этого необходимо:

  1. Обработать пятно уксусом или лимонным соком.
  2. Подождать 20 минут.
  3. Тщательно промыть теплой водой из душа.

Таким образом можно очистить акриловую ванну.

При образовании царапин можно выполнить следующие мероприятия:

  1. Мягкой шлифовальной бумагой предельно аккуратно затереть место царапины.
  2. Нанести на обрабатываемый участок полировочную пасту.
  3. При помощи мягкой тряпки аккуратно отполировать поверхность.
  4. Затем вытереть поверхность чистой тряпочкой.

Механическим способом удалять загрязнения можно только с изделия, при изготовлении которого применялся литьевой акрил. Поэтому, прежде всего, необходимо прочитать инструкцию по эксплуатации ванны.

Сущим бедствием является появление известковых отложений. Чтобы избавиться от них, необходимо выполнить следующие мероприятия:

  1. Налить воду. Довести ее температуру до 25 °С. Объем воды должен полностью покрывать все известковые отложения не менее чем на 5 см.
  2. Необходимо добавить в воду 1,5 литра 7% раствора лимонной кислоты или уксуса.
  3. Затем надо перемешать воду и подождать 12 часов.
  4. После этого воду выливают, тщательно промывают ванну проточной водой и вытирают чистой сухой тряпкой.

Эту процедуру необходимо проводить раз в год.

Проведение дезинфекции

Необходимо по крайней мере один раз в год проводить дезинфекцию ванны. Для этого надо выполнить такие действия:

  1. Наливаете в ванну воду. Доводите температуру до 20 °С.
  2. Добавляете в ванну моющие средства для чистки акрила, имеющие дезинфицирующий эффект. Их можно купить в магазинах бытовой химии.
  3. Тщательно перемешиваете воду и через 10 минут сливаете.
  4. Моете ванну проточной водой для удаления остатков антисептиков.
  5. Протираете сухой тряпкой.

Правильный и регулярный уход сможет надолго сохранить качество акрила и увеличить срок его эксплуатации.

Чем можно и нельзя мыть акриловую ванну, советы по уходу

Чем мыть акриловую ванну? Такой вопрос возникает у хозяек, которые прибрели сантехническое изделие из этого материала, или же, оно было покрыто им во время реставрации. В любом случае, средства, используемые для чистки эмали не подходят для ухода за этим полимером, можно с легкостью повредить капризную поверхность, а значит, придется быть осторожнее при выборе.

Народные средства

Существует ряд веществ, которые есть практически в любом доме и они подходят для чистки акриловой поверхности:

  • Лимонная кислота

Ее рекомендуется использовать, чтобы удалить известняковые отложения. Достаточно наполнить ванну горячей водой, всыпать пакетик кислоты, перемешать и оставить на пару часов. Затем, вода спускается, а поверхность чаши промывается струями воды, ее следует протереть тряпочкой, чтобы не осталось разводов.

Если осуществлять подобную чистку в домашних условиях раз в 10-12 месяцев, то, можно обойтись без специальных средств, продающихся в магазинах.

При значительных загрязнениях дозировку кислоты следует увеличить до 3-х пакетиков. Но, подобная процедура считается агрессивной и ее проводят только если в этом есть особая необходимость.

Для борьбы с ржавчиной и известью подобное оригинальное средство не подойдет, но с его помощью можно удалить незначительные пятна на ванне. Пасту наносят на щеточку, можно использовать зубную и оттирают нужный участок. После ее смывают водой.

  • Содово-мыльный раствор

Акриловую ванну лучше чистить пищевой содой, которая является слабой щелочью, не способной повредить материалу. Из соды и мыла следует приготовить смесь, нанести ее на загрязненные участки и оставить на полчаса. После, раствор смывается, при необходимости, можно пройтись губкой или щеткой с мягким ворсом.

Также, можно приготовить кашицу из соды и небольшого количества воды, которой покрывают стенки ванны. Спустя 20 минут ее удаляют влажной губкой.

Подобное средство подходит, если нужно почистить ванну от свежих пятен и незначительного налета.

  • Нашатырный спирт и перекись водорода

При помощи данной смеси можно избавиться от известкового налета, ржавчины и желтизны. Жидкости смешиваются 1:1, ими пропитывают ткань или губку и протирают поверхность чаши.

  • Поваренная соль

Чистить акриловую ванну, если имеется застарелая ржавчина, можно обычной мелкой солью. Ее насыпают на поверхность губки, смачивают водой и оттирают пятна. Но, следует помнить, что соль является абразивом, а значит, действовать желательно очень аккуратно.

Подобное вещество позволяет очистить очень сильные загрязнения с поверхности акриловой чаши. Потребуется 1 литр уксуса, который выливают в ванну, наполненную теплой водой. Средство оставляют на 10-12 часов, можно на ночь, а после сливают и ополаскивают. Такой метод не рекомендуется использовать, если не возникает особая потребность.

Также, можно насыпать пищевую соду на предварительно увлажненную поверхность, а спустя 15 минут полить 9%-м уксусным раствором. Загрязнения обрабатываются щеткой.

Позволяет удалить с поверхности ржавчину. Свежевыжатую жидкость наносят на пятно, ждут около 15 минут и смывают теплой водой.

Дезинфекция акриловой ванны

Ванная комната — помещение с высокой влажностью, в котором нередко появляются грибки и плесень, поэтому, важным моментом является обязательная дезинфекция. В ежегодной обработке нуждается и чаша ванны. Дезинфицировать ванну из акрила можно следующим образом:

  • чашу наполняют водой температуры 20-25°С;
  • выливают одну упаковку моющего средства, обладающего дезинфицирующим действием, например, Равак ;
  • воду с чистящим составом следует перемешать и оставить на 10 минут;
  • спустя указанное время воду спускают, чашу ополаскивают;
  • последний шаг — насухо протереть стенки ванны.

Процедура требует использование защитных перчаток. После мероприятия ванную комнату следует тщательно проветрить.

Специальные средства для ухода за акрилом

Если хозяйка решит использовать чистящие средства, приобретенные в магазине, то следует учитывать, что мыть ванну, покрытую акрилом, составами для обычных поверхностей нельзя.

Но, современные химические производства предлагают широкий выбор специальных средств, предназначенных для ухода за акриловыми поверхностями. Составы мягко воздействуют на материал, устраняя пятна и подтеки и при этом, не повреждают его. Чаще всего, они обладают кремовой или гелевой консистенцией. Среди популярных чистящих средство можно отметить следующие:

  • Акрилан — обеспечивает комплексный уход — борется даже с застарелыми пятнами, дезинфицирует, образует на стенках ванны защитный слой, не позволяющий скапливаться бактериям;
  • Сиф (крем, спрей, паста) — универсальное средство, отличающееся бережным отношением к деликатным полимерам и высокой эффективностью;
  • Мистер Чистер — недорогая чистящая жидкость, при помощи которой можно удалить известковый налет и ржавчину.
  • Тим-профи — современное дезинфицирующее средство, удаляющее налет и загрязнения любой сложности, придает очищаемой поверхности блеск, устраняет неприятные ароматы;
  • RAVAK Turbocleaner — чтобы растворить известковые отложения, достаточно нанести состав и подождать;
  • Сан Клин — относится к многофункциональным составам, эффективным в борьбе с различными минеральными отложениями.
  • Тритон — дезинфицирующее средство, рекомендуется к использованию, если требуется уход и чистка старой ванны, имеющей застарелые загрязнения.

Гель или крем наносят на губку или салфетку, которыми протирают чашу ванны. Желательно оставить средство на 5-7 минут, а после смыть большим количеством воды и вытереть насухо.

Особенности ухода за акриловым изделием

Правильный уход за акриловой ванной позволит увеличить срок эксплуатации изделия и надолго сохранить его эстетический вид. Помимо этого, если выбрать подходящее средство и использовать его регулярно, то чаша будет сиять белизной, без подтеков, налета, трещинок и царапин.

Споласкивать ванну следует после каждого использования и вытирать ее сухой салфеткой. Если нет стойких загрязнений, то помыть акриловую ванну можно обычным хозяйственным или детским мылом, жидкостью для посуды. Также, можно добавить в теплую воду гель для стирки или немного порошка, растворить, получившейся пеной обработать стенки чаши и смыть водой.

Чтобы вернуть полимерной поверхности блеск, можно взять мягкую ткань, пропитать ее полиролью на основе воска и натереть стенки чаши.

Один нюанс — акрил является хоть и прочным, но термопластиком, который неустойчив к воздействию высоких температур.

При индивидуальной системе нагрева воды следует не допускать попадания в ванну кипятка, иначе поверхность деформируется.

Чем нельзя чистить акриловую поверхность?

Чтобы сантехническое изделие служило долго, следует учитывать, что существует множество средств, которыми нельзя чистить акриловые поверхности. Испортить ванну можно, применяя следующие вещества и составы:

  • стиральный порошок в сухом виде, без предварительного растворения в воде — его гранулы способны оставлять на поверхности микроскопические царапинки;
  • чистящие порошки с абразивными частицами;
  • хлорсодержащие средства — уже после первого применения стенки чаши могут помутнеть; в дальнейшем, хлор начинает разъедать синтетический полимер, он становится пористым, утрачивает глянец, становится шершавым;
  • растворители, содержащие ацетон — агрессивное вещество приведет не только к помутнению поверхности, но сразу разъест акрил;
  • отбеливатели и другие химические препараты, в состав которых входит аммиак — это вещество менее враждебно относится к полимерам, однако, также способно разрушать их структуру;
  • средства с токсическим компонентом формальдегидом — газом, который растворялся в воде и ранее использовался в химической промышленности, несовместим с акрилом.

Также, не подходят для обработки этого материала концентрированные спирты, кислоты, щелочи.

Вред от воздействия сильнодействующих химических веществ может быть различным. Одни из них способны делать синтетический полимер тусклым, шершавым, другие же — прожечь его. Поэтому, выбирая подходящий препарат, не лишним будет ознакомиться с его составом и инструкцией к применению.

Засохшую грязь со стенок чаши не стоит отскребать, нанося вред покрытию, лучше чистить изделие, когда налет отмокнет. Для этого, достаточно набрать в ванну воды и подождать.

Не стоит мыть ванну с акриловым покрытием щеткой с жестким ворсом или губкой, снабженной напылением из металла. После чистки можно обнаружить на изделии царапины и другие повреждения.

Акриловая ванна имеет красивый внешний вид, проста и легка в уходе. Но, только в том случае, если эксплуатация осуществляется правильно и для ухода подбираются подходящие составы.

Загрузка...

Чем можно мыть, чистить и дезинфицировать акриловую ванну

Сейчас многие люди во время ремонта ванной комнаты меняют старые ванны из чугуна и стали на более практичные и легкие модели из акрила. Достоинств у этой ванны много, но нужно знать все особенности ухода. Разобраться, чем можно чистить акриловую ванну и как не испортить покрытие. Но вначале нужно понять, что такое акриловая ванна.

Ванна из акрила: Описание и общие сведения

Для изготовления акриловых ванн используется специальный материал, который называется сантехнический акрил. Довольно долговечный и прочный, акрил продолжительное являлся дорогостоящим сырьем. К примеру, его применяли лишь для протезирования зубов. Однако прогресс привел к удешевлению изготовления и сегодня любой человек может установить дома качественную сантехнику. Чтобы выбрать средство для очистки акриловых ванн и разобраться чем моют акриловые ванны, а что использовать нельзя, необходимо знать следующее:

  • Чаши могут быть литые и экструдированные.
  • Литой акрил по стоимости чуть дороже экструдированного, но имеет лучшую прочность. Эта чаша хорошо сохраняет форму, и гораздо устойчивей к химическим средствам, потому проще выбрать моющее средство для акриловых ванн.
  • Экструдированный акрил недостаточно хорошо сохраняет форму, поэтому его армируют дополнительно эпоксидными смолами или стекловолокном. Установка этого аксессуара проводится лишь на основание, изготовленное из влагостойкой фанеры или металла.

Размеры и формы аксессуаров представлены в большом количестве, и многие ванны позволяют оборудовать чашу озонаторами, гидромассажными установками, установить подсветку и т.д.

Преимущества и недостатки акриловых чаш

К достоинствам ванн из акрила относятся такие качества:

  • акрил, являясь инертным химическим материалом, не подвержен коррозии и потому, нужно только подобрать средство для мытья акриловых ванн, чтобы в приличном виде сохранить сантехнику;
  • хорошие теплоизоляционные свойства;
  • акриловым ваннам дезинфекция требуется гораздо реже, чем любым остальным. Материал имеет естественную способность противостоять появлению на поверхности ванны грибков и бактерий;
  • любая ванна из акрила довольно легко моется. Потому, когда дома нет средства для очистки ванн, попробуйте просто вымыть чашу обильным количеством воды, как правило, этого достаточно.

Недостатки:

  • возможность потери привлекательного внешнего вида от воздействия кипятка;
  • при использовании абразивов появляются царапины;
  • уязвимость к механическим воздействиям.

Уход за акриловыми ваннами

Невзирая на то, что материал считается одним из лучших, за ванной нужно ухаживать. Обычные моющие средства подходят для акриловых ванн, только если они в составе не имеют агрессивной химии. Если не знаете, каким средством мыть акриловую ванну, то можно выбрать любое универсальное моющее средство, которое не содержит отбеливающих составов и абразивных частиц.

Вопрос, чем помыть ванну из акрила, несложный. Поверхность изделия очень гладкая, потому очищается довольно просто: после водных процедуры чашу нужно лишь сполоснуть теплой водой и насухо вытереть. Если же требуется более тщательная очистка, то нужно выбрать специальные чистящие средства для акриловых ванн и с помощью мягкой губки вымыть поверхность чаши.

Выбирая, чем почистить акриловую ванну, большинство пользователей выбирают отдельно средства для полировки, мытья, дезинфекции и очистки от водного камня. Но изготовители предлагают чистящие средства, которые справляются с любыми возможными загрязнениями. Для тех, которые еще не знает, каким средством чистить акриловую чашу, полезно познакомиться с некоторыми средствами для очистки:

  • Равак – это линейка химических средств для домашнего использования. Когда выбираете, чем мыть ванну из акрила, то обязательно внимание обращайте на рекомендации: на любой упаковке находятся указания о назначении конкретной химии. Одним из достоинств бытовой химии этой линейки является ее экономность и возможность справляться со сложными ситуациями: обновление защитного слоя, отложения извести, устранение накипи, жира и т.д.
  • Акрилан является довольно мощными средством для очистки и работает с любыми загрязнениями. Популярность «акрилана» объясняется его простотой применения и удобством удаления с поверхности остатков этого моющего средства. Как почистить акриловую ванну при помощи «акрилана»: из распылителя нанести состав на поверхность ванны и тут же вытереть мягкой губкой. Эта очистка позволяет сразу убрать известковый налет, плесень, остатки мыла и даже ржавчину. При этом средство настолько щадящее, что почти не портит поверхность изделия.
  • Компания Kopla. Выбираете, чем вымыть акриловую поверхность, но в то же время не хотите тратить много денег — обратите внимание на данную линейку. Ремонт небольших царапин, полировка – все это возможно, когда под рукой находится Акрил Полиш.
  • Тим Профи – компания, которая изготавливает средства, не содержащие абразивных частичек. Если выбираете, чем вымыть покрытие, приобретайте любой гель! Помимо того, что состав отлично чистит поверхность, он еще и легко смывается водой, после себя оставляет блеск и защитную пленку.

Как чистить любым из вышеперечисленных средств указано в инструкции.

Как убрать водный камень?

Отлично справляется с водным камнем лимонная кислота или уксус. Но уксус необходим не более 7%. Необходимо ванну наполнить теплой водой. Всыпать пачку лимонной кислоты или вылить полтора литра уксуса, все смешать ковшом и оставить на ночь. После смыть чистой водой, вытереть насухо поверхность и любоваться идеальной белизной.

Сода и уксус от ржавчины

Согласитесь, что неприятно купаться в ванной, где свирепствует ржавчина и желтый налет. Вам в этой ванне даже душ не захочется принять, что тут говорить про полноценные процедуры. Но уксус и сода помогут придать ванне первозданный вид.

Начать необходимо с того, что сода может быть пищевой (для приготовления блюд) и кальцинированной (специально для избавления от загрязнений). И оба варианта можно успешно применять для очистки ванны, но в разных ситуациях.

Когда вы имеете дело с мелкими загрязнениями, то можно использовать обычную пищевую соду.

  • Возьмите с мягкой щетиной щетку или губку.
  • Насыпьте на нее немного соды.
  • Натрите поверхность и оставьте на час.
  • Затем все смойте теплой водой.
  • Протрите насухо.

Если периодически чистить поверхность этим способом, то она еще очень продолжительное время порадует вас своей идеальной белизной.

Немного сложней обстоит дело, когда ваша ванна значительно загрязнена ржавчиной или желтым налетом. В данной ситуации только пищевой соды недостаточно. Нужно воспользоваться пищевой и кальцинированной содой, а также промышленным отбеливателем и уксусом.

  • Сделайте чистящую смесь. Для чего возьмите две столовые ложки двух видов соды и насыпьте в стакан. Добавьте немного воды.
  • Натрите чашу данным раствором и оставьте его на полчаса.
  • Перемешайте полчашки уксуса и полчашки промышленного отбеливателя.
  • Нанесите данный раствор сверху предыдущего слоя, оставьте его еще на 30 минут.
  • Вытрите обработанную чашу щеткой или губкой с мягкой щетиной, затем смойте большим объемом воды.

Внимание: чтобы не получить химического ожога с уксусом и содой нужно работать только в перчатках! Если вы этим способом обработаете ванну, то сможете подарить ей вторую жизнь, и она еще очень долго в повторной процедуре не будет нуждаться.

Дезинфекция

Даже такой современный материал, как акрил спустя, определенное время, скапливает в себе микробы, а простое мытье не всегда может справиться с уничтожением бактерий. Как почистить акриловую поверхность, мы уже рассказали, но вот можно ли отмыть чашу и одновременно ее продезинфицировать? В этом случае приходят на помощь, как бытовая химия, так и подручные средства. Как можно очистить ванну:

  • обычный раствор хлора 7% даст необходимый эффект;
  • специальные препараты от Равак, Тим Профи и других производителей.

Процедура проходить обязана всегда одинаково: заполнить чашу водой (не более 22 градусов тепла), добавить состав и оставить на полчаса. Затем всю поверхность промыть из шланга, насухо протереть и проветрить ванную комнату.

Внимание: Процедуру дезинфекции необходимо выполнять не менее одного раза в год, но не больше 3-4 раз в месяц!

Теперь вы знаете, какими средствами и чем мыть акриловую поверхность, осталось лишь подобрать необходимый вариант и воспользоваться им. Помните и о простых составах, которые доступны по стоимости: простой мыльный раствор сможет справиться с загрязнениями нисколько не хуже самого дорогостоящего средства. Самое важное, чтобы в жидкости не присутствовало песка или иных абразивов.

Чем нельзя мыть акриловые ванны?

Чтобы через определенное время чаша из акрила не потеряла свой первозданный вид, необходимо непременно знать, какими можно средствами мыть акриловую ванну в домашних условиях и, наоборот, чем нельзя ни в коем случае чистить. Итак, нельзя использовать следующее:

  • химические препараты абразивного характера;
  • различного рода порошки, которые не растворились полностью в воде;
  • жесткие щетки из различных металлов;
  • препараты, имеющие агрессивный характер и крайне негативно влияющие на состояние акрила.

Если вы, таким образом, будете чистить поверхность акриловой чаши, то уже очень скоро вы сможете повредить ее, что в результате потребует дополнительных затрат на реставрацию этого изделия.

Подводя итог

Акриловые ванны уже прочно и довольно давно вошли в быт современных людей. Это легкие, прочные и простые в уходе аксессуары, которые доступны как в ценовом диапазоне, так и идеальные в выборе форм и цветового разнообразия. Помимо этого, акрил имеет меньшую теплопроводность, в отличие металла, а это уже значительная экономия денег. Потому довольно важно знать, как чистить или мыть акриловую ванну, в противном случае можно причинить непоправимый урон покрытию и его нужно будет восстанавливать, а это стоит довольно дорого.

Уход за акриловой ванной в домашних условиях

Акриловые ванны всё чаще выбираются потребителями на замену пришедшим в негодность стальным и тяжёлым чугунным. Действительно, таким сантехническим приборам свойственен очень привлекательный, аккуратный внешний вид, они отличаются небольшим весом и исключительной белизной. Кроме того – представлены в очень широком разнообразии форм и размеров.

Уход за акриловой ванной в домашних условияхУход за акриловой ванной в домашних условиях

Кроме этого, акриловые изделия обладают рядом других преимуществ, одним из которых является полная инертность к коррозии. Тем не менее, это вовсе не снимает с хозяев обязанностей регулярно проводить чистку поверхностей. И вообще – уход за акриловой ванной в домашних условиях должен быть систематичным — только в этом случае она сохранит свой первоначальную новизну на долгие годы. Кстати, аналогичные правила следует соблюдать и тем владельцам жилья, которые обновили старые стальные или чугунные ванны акриловыми вкладками.

Свойства акриловой поверхности ванны

При производстве акриловых сантехнических аксессуаров применяется специальный полимер, отличающаяся достаточной твёрдостью и износостойкостью. Но считать его лишённым недостатков – никак нельзя.

Явное достоинство акриловых ванны — они отлично смотрятся в сочетании с любой отделкой помещения.Явное достоинство акриловых ванны — они отлично смотрятся в сочетании с любой отделкой помещения.

Так как «плюсы» и «минусы» акриловых изделий напрямую сказываются и на правилах их эксплуатации, и на рекомендациях по регулярному уходу, имеет смысл вкратце их перечислить.

Сначала — о достоинствах:

  • Такие ванны значительно лучше и дольше сохраняют тепло набираемой в них воды. Принимать процедуры в них по этой причине – комфортнее.
  • Уязвимым местом чугунных и стальных ванн всегда является эмалевый слой. В случае даже небольшого его скола образуется очаг коррозии. С акриловыми такой опасности нет.
  • Акриловые ванны обладают грязеотталкивающими свойствами. Это препятствует образованию в порах материала благоприятной среды для развития микрофлоры, что особенно важно в условиях постоянной влажности и повышенной температуры.
  • В продолжение предыдущего пункта — поверхность акриловой ванны легко очищается от грязного налёта (если, конечно, совсем не запущена).
  • Лёгкость изделий значительно упрощает и транспортировку, и монтаж.
  • Наконец, технология изготовления таких ванн позволяет выпускать изделия разнообразного дизайна – по форме, размерам, цвету, оснащённости. То есть предлагаемый выбор моделей – несравнимо шире, чем стальных или чугунных.

Но недостатки тоже есть, причём – весьма существенные:

  • Материал неустойчив к высоким температурам. Понятно, что критический рубеж в 160 ℃, вызывающий плавление акрила, в условиях ванной комнаты невозможен даже теоретически, но даже очень горячая вода в сочетании с механической нагрузкой иногда приводит к образованию деформаций. Особенно если ванна – из разряда недорогих, тонкостенных.
  • Нельзя назвать выдающимися и прочностные качества многих акриловых изделий. Зачастую можно явственно почувствовать прогиб дна ванны под ногами, что уже вызывает определённый психологический дискомфорт. Кроме того, наряду с такой пластичностью, отмечается и хрупкость – неустойчивость стенок к акцентированным механическим нагрузкам – ударам. Нередко это заканчивается образованием трещины.
  • Акрил всё же остаётся довольно чувствительным к бытовой химии. То есть применять безоглядно любые моющие и чистящие средства – недопустимо, так как можно безнадёжно испортить ванну.

К недостаткам можно отнести и довольно высокую стоимость акриловых ванн. А также то, что рынок наводнён некачественной, кустарно изготовленной продукцией, которую, впрочем, «невооружённым взглядом» трудно отличить от заслуживающей внимания. Но служить такая ванна однозначно долго не станет.

Основные правила ухода за акриловыми поверхностями

Владельцы акриловых ванн, хорошо знакомые с уходом за ними, подтвердят, что содержать их в должном состоянии — довольно-таки несложно, хотя и для этого потребуется определённое время. Достаточно после каждого приёма водных процедур протирать внутреннюю поверхность ванны мягкой салфеткой, смоченной в тёплой воде, а затем желательно вытереть и насухо. При этом оптимальным решением можно считать снижение до возможного минимума использования химических средств для очистки акрила. Сложность содержания аксессуаров из этого материала состоит лишь в том, что порой не хватает времени и сил для проведения ежедневной уборки.

Очистка акриловой ванны махровой салфеткой и тёплой водой.Очистка акриловой ванны махровой салфеткой и тёплой водой.

Чтобы сохранить поверхность акриловой ванны в первоначальном состоянии длительное время, кроме частой очистки мягкой влажной тканью, следует знать и соблюдать несколько правил: 

Трещины на акриловой поверхности чаще появляются у ванн, изготовленных по технологии литья.Трещины на акриловой поверхности чаще появляются у ванн, изготовленных по технологии литья.
  • Уже отмечалось, что акриловые поверхности недостаточно устойчивы к механическим воздействиям. И, кстати, чаще всего царапины на ваннах появляются именно в процессе их очистки. Поэтому категорически следует исключить из применения губки, имеющие абразивную поверхность. Для очистки подходят только мягкие губки или тканевые салфетки.  
  • Современные модели акриловых ванн отличаются более высокой прочностью, чем появившиеся на заре распространения этой технологии. Тем не менее, и при их эксплуатации следует соблюдать определенную осторожность. Сколы на акриле могут появиться в результате падения в ванну различных металлических или острых предметов, стеклянной, фарфоровой или фаянсовой посуды, поэтому нельзя хранить такое на полках, расположенных над ванной.
Ванна из армированного акрила – такие изделия больше подвержены сколам.Ванна из армированного акрила – такие изделия больше подвержены сколам.
  • Следует знать, что существует два типа акриловых изделий, изготовленных по разным технологиям — это литые и армированные ванны. Уход за их поверхностью осуществляется одинаково, но по механической стойкости они различаются между собой.

Армированные изделия состоят из нескольких слоёв, средний из которых представляет собой стекловолокна с добавлением эпоксидных смол. Армирование делает ёмкость более прочной, но одновременно повышает риск появления сколов. При падении на такую поверхность тяжёлых предметов часть внешнего акрилового слоя может отслоиться и отколоться.

Цены на акриловые ванны Cersanit

акриловая ванна Cersanit

Литые ёмкости больше подвержены повреждениям в виде царапин. Но иногда, особенно при неправильном монтаже каркаса под ванну, она может просто расколоться.

  • В акриловой ёмкости не рекомендуется замачивать бельё. Дело в том, что длительное воздействие на этот материал водного раствора порошка, а также отделяющихся от ткани загрязнений, негативно влияет на поверхность материала. Ванна быстро потеряет свою белизну и гладкость стенок.
Моющие средства для акриловой сантехники – ищите прямые указания в описаниях продукции.Моющие средства для акриловой сантехники – ищите прямые указания в описаниях продукции.
  • Если производить очистку сантехники модно большинством привычных моющих средств, то для акрила следует выбирать специальные составы. В том же случае, когда нет возможности приобретать их постоянно, можно задействовать домашние средства с мягким чистящим эффектом. Выбирая готовый состав для мытья акриловой поверхности, следует внимательно изучить его упаковку, на которой указываются ингредиенты, а также его предназначение.
  • Если принято решение использовать для очистки ванны готовые химические составы, следует помнить, что применять, их рекомендуется не чаще, чем один раз в 10÷14 дней. Иначе поверхность потеряет свою гладкость и белизну. В промежуток времени между «генеральными» чистками необходимо пользоваться только влажной губкой или салфеткой.
  • Нельзя для мытья полимерной сантехники применять обычные порошковые, жидкие или пастообразные моющие составы, имеющие абразивные вкрапления. Они способны не только оставить на поверхности царапины, но и сделать её полностью матовой. А это приведёт к тому, что грязевые частицы будут задерживаться на стенках ванны. Избавиться от такого въевшегося налёта — уже намного сложнее.
  • Недопустимо производить очистку ванн, изготовленных из акрила, средствами, содержащими щавелевую кислоту, спиртосодержащие растворители, а также ацетон. Эти вещества способны не только уничтожить глянец, но и деформировать полимерное изделие. Чистящие средства, содержащие хлор, также способны нанести ущерб поверхности материала.
  • Нельзя в ваннах из акрила или покрытых акриловым слоем купать домашних животных, так как они своими когтями могут нанести на поверхность царапины различной глубины. В случае необходимости произвести подобные мероприятия, следует дно, а также стенки ёмкости обезопасить, закрыв их, например, старыми полотенцами.
  • Нельзя производить в ванне очистку посуды, а также предметов, изготовленных из любого материала, имеющих острые углы, способные повредить поверхность.
  • Ванна потеряет свой первоначальный эстетичный внешний вид, если её заполнять кипятком или же водой, нагретой до температуры, превышающей 65 градусов. Под воздействием высокой температуры акрил не только потеряет свою гладкость, но может и деформироваться.
  • Недопустимо чистить внутреннюю поверхность жёсткими щётками.

Все перечисленные выше предосторожности являются необходимой мерой сохранения ванны в первоначальном белом и гладком состоянии. Поэтому, приобретая акриловое изделие или же производя реставрацию старой ванны, необходимо учитывать все обозначенные моменты.

Какие составы можно применять для акриловой сантехники?

Следует рассказать подробнее о готовых моющих средствах, подходящих для очистки полимерных ванн — на что необходимо обратить внимание при их выборе.

  • На упаковке специализированных составов должно быть указано то, что они безопасны для сантехнических аксессуаров, изготовленных из акрила.
  • Кроме специально предназначенных составов для очистки акриловых поверхностей, подходят и некоторые универсальные растворы, но они не должны содержать агрессивных ингредиентов, таких, как некоторые виды кислот, ацетон, спирт и аммиак.

Недостатком готовых моющих средств для акриловых изделий является их высокая цена, а также то, что их применение должно быть строго дозировано. Необходимо отметить, что отечественные моющие растворы имеют более доступную цену, хотя часто обладают совершенно аналогичным с импортными составами действием.

Готовые патентованные средства для ухода за акрилом

Преимущество готовых очистительных средств, имеющих химическую основу, состоит в том, что они не только избавляют акрил от загрязнений, известкового налёта, ржавчины и желтизны, но и создают на его поверхности защитную, визуально незаметную плёнку.

Итак, среди всех существующих составов для очистки акрила можно выделить следующие составы, которые заслужили позитивные отзывы пользователей:

ИллюстрацияНаименование и краткие характеристики моющего средства
«Акрилан» — этот состав представляет собой чистящую пену, призванную устранять такие загрязнения, как известковый налет, мыльные разводы и ржавчину.
Средство легко справляется с разными видами пятен. После смывания пены, на поверхности акрила остается защитная пленка, которая препятствует скоплению грязи в порах материала.
Чтобы состав был эффективен, его следует использовать в соответствии с инструкцией, приложенной производителем. Очень важно не оставлять нанесенную на поверхности пену до полного высыхания. Кроме того, недопустимо смешивать «Акрилан» с другими моющими средствами.
«DEC» — это средство производится в виде крема и предназначено для очистки не только акриловых сантехнических изделий, но и кафеля, хромированных и других поверхностей.
Состав включает в себя антисептические добавки, предотвращающие размножение вредоносных бактерий и грибковых образований в труднодоступных местах сантехнических аксессуаров.
Попутно при смывании средство отлично очищает канализационную систему. Благотворно сказывается на металлических деталях гидромассажных моделей ванн.
«Тритон» – довольно популярное средство для очистки акриловых ванн, которое может реализовываться с виде концентрата или же готового к применению раствора.
Концентрат продается в таре большой емкости и предназначается для активной борьбы с серьезными загрязнениями и для масштабных санитарных обработок от распространения бактерий.
Раствор обычно фасуется в емкости с пульверизатором, используется для удаления известкового налета и жирных пятен, а также дезинфекции ванны.
«Мистер Чистер» — применяется не только для приведения в порядок акриловых ванн, но и металлических сантехнических аксессуаров.
Средство отлично справляется со ржавчиной, известковым налетом, пятнами жира и мыльными разводами, при этом щадяще воздействуя на поверхности и не нанося им механических повреждений.
В состав «Чистера» входит полимерная добавка, которая создает на поверхностях пленку, предотвращающую образованию грязевого налета. Антисептические добавки защищают ванны или раковины от появления бактерий и грибковых колоний.
Средство работает быстро, поэтому не придется долгое время ожидать его воздействия на очищаемый материал.
«Cif» — это знакомое всем россиянам средство имеет несколько линеек, некоторые из них подходят и для очистки акриловых аксессуаров.
Производится «Cif» в виде крема и спрея, которые используются в основном для профилактических мероприятий. Благодаря этому составу акрил эффективнее противостоит прилипанию и проникновению в поры материала грязевых отложений.
Однако, с сильными загрязнениями, известковыми отложениями и плесенью «Cif» не справляется.
«Meine Liebe» поступает в продажу в виде спрея. Показывает высокую эффективность в борьбе с ржавыми пятнами, плесенью и известковым налетом, а также удаляет неприятные запахи.
Средство имеет фруктовый аромат, а в его состав входит лимонная кислота, которая является основным действующим веществом.
«Meine Liebe» создает на поверхностях защитную пленку, благодаря которой ванна будет оставаться чистой намного дольше.
Спрей достаточно экономичен, поэтому одного флакона хватает надолго, а также экологически безопасен, так как не содержит токсичных ингредиентов.
«UNICUM» производится в виде спрея, предназначенного для очистки акрила от плесени, извести и ржавчины.
Благодаря форме выпуска, средство может быть нанесено на отдельные, наиболее загрязненные участки ванны. Через 15 ÷20 секунд спрей втирается мягкой салфеткой, а затем смывается теплой водой, вместе с которой уходят и загрязнения.
«UNICUM» бережно относится к очищаемым материалам, при этом производя качественную уборку при малом расходе моющего средства. После смывки очищающего состава, на акриле остается защитная пленка.
«Sanfor Акрилайт» — этот состав предназначен для капитальной очистки, обеззараживания, а также обновления ванн из акрила и поддонов душевых кабин. Кроме того, средство эффективно чистит системы джакузи.
С помощью «Акрилайт» удаляются даже самые застарелые загрязнения, известковый камень и мыльный налет.
При этом состав эффективно работает, создавая на поверхностях защитную пленку, продлевая эксплуатационный срок аксессуаров, облегчая уход за ними, а также придавая глянец на длительное время.
«Золушка» — эффективное средство для чистки акриловых изделий, которое может стать идеальным вариантом для тех, кто еще не определился, какой из составов выбрать.
Оно отлично справляется со всеми возникающими на акриле загрязнениями. Однако, «Золушка» имеет один существенный недостаток — это едкий запах, появляющийся при проведении очистки. Потому для работы рекомендуется надеть на руки защитные перчатки, а дыхательные пути обезопасить маской.
Нанесенное средство оставляется на семь-десять минут, а затем смывается теплой проточной водой, после чего поверхность протирается мягкой тканью.

Никогда не следует забывать, что химические средства могут стать как надёжным помощником при удалении загрязнений, так и «вредителем», который окончательно испортит поверхность акрила. Поэтому применять их следует не чаще одного-двух раз в месяц. Для более частой уборки акриловых изделий следует использовать менее агрессивные составы.

Если для очистки ванны выбрано одно из химических средств, то прежде, чем наносить его на всю площадь ёмкости, рекомендуется использовать на небольшом, не слишком заметном участке поверхности. Если акрил не проявит негативную реакцию, то можно переходить к «полномасштабным мероприятиям».

Подручные доступные средства для очистки акрила

Не настолько агрессивны вещества, которые можно найти на любой кухне или в домашней аптечке. Они более мягко воздействуют на акрил, и в то же время довольно неплохо справляются с большинством загрязнений.

Народные средства для очистки ванн из акрила порой особо не и проигрывают по качеству уборки патентованнымНародные средства для очистки ванн из акрила порой особо не и проигрывают по качеству уборки патентованным

К таким средствам относится лимонная кислота, пищевая сода, уксус, хозяйственное мыло, перекись водорода, перманганат калия. Они могут применяться один ÷ два раза в неделю без последствий для материала.

Далее будут приведены несколько рецептов, используемых для очистки акриловых поверхностей сантехнических приборов.

  • Лимонную кислоту необходимо растворить в тёплой воде, после чего раствор наносится на загрязнённые участки ванны. Для изготовления этого состава потребуется 250 мл воды и 100 граммов кристаллической кислоты.
  •  Пищевую соду (2÷3 столовых ложки) необходимо залить 500 мл горячей воды, которая её погасит и растворит. После того как закончится реакция, в раствор необходимо добавить 500 мл холодной воды. Тёплый состав наносится на стенки и дно ванны на 10÷15 минут. После этого ёмкость ополаскивается тёплой водой.
  • Хозяйственное мыло (15 г) необходимо натереть на крупной тёрке, залить 500 мл горячей воды и, размешивая, добиться полного растворения. Затем в мыльный раствор добавляется одна столовая ложка соды. Полученную смесь наносят на стенки ванны и оставляют примерно на полчаса. После этого смывают тёплой водой, одновременно протирая чистой салфеткой.

Если говорить о загрязнениях определённого характера, то для их удаления используются следующие рецепты:

Очистка или отбеливание ванны лимонной кислотой.Очистка или отбеливание ванны лимонной кислотой.
  • Не слишком толстый слой известкового налёта можно удалить с помощью лимонной кислоты или же концентрированного лимонного сока. Для этого ванну необходимо заполнить горячей водой, температура которой не должна превышать 60 градусов. Затем туда высыпается 100÷150 г лимонной кислоты и хорошо перемешивается. Можно предварительно сделать из кислоты насыщенный раствор, который быстрее разойдётся в большом объёме ванны. Сливают воду в канализацию спустя два — три часа после заполнения ванны, после чего её необходимо ополоснуть тёплой проточной водой.
Очистка ванны содой.Очистка ванны содой.
  • Если известковый налёт по недогляду образовал уже довольно толстый слой, то с ним можно попробовать справиться с помощью обработки его содой, а затем уксусом. Для этого на поверхность наносится содовый раствор (1000 мл воды и 100 г соды), сверху него уксусный состав (вода и 9% уксус, взятые в пропорции 1:1). Между содой и уксусом должна произойти реакция, которая длится примерно 5÷7 минут. По её завершении поверхности промываются водой. При необходимости подобный процесс очистки следует повторить.
  • Жёлтые пятна и не въевшуюся в поры полимера ржавчину необходимо обработать содой или перекисью водорода. Составы наносятся и оставляются на 15÷20 минут, а затем смываются тёплой водой.
  • Не особо глубоко въевшиеся пятна плесени, в основном появляющиеся на герметике по периметру ванны, можно удалить перекисью водорода.
  • Ржавчина чаще всего появляется на поверхности ванн из-за подтекающего водопроводного крана. Если пятно въелось, и на него уже не действует ни одно из готовых или подручных составов, то его следует аккуратно затереть мелкозернистой наждачной бумагой. После этого очищенное место необходимо обработать специальным составом — полиролью для акрила. Действовать необходимо крайне аккуратно, иначе можно только ухудшить ситуацию.

Ежедневный уход за ванной

Как уже говорилось выше, чтобы избежать длительных процедур по очистке сложных въевшихся пятен и разводов, желательно после каждого приёма водных процедур производить хотя бы лёгкое мытьё ванны. Такой процесс не займёт много времени, так как состоит из очень простых манипуляций:

  • Губка намыливается любым мылом, а чтобы ускорить процедуру — лучше применять жидкие типы мыла.
  • Затем этой губкой натираются все поверхности ванны.
  • После этого ёмкость обильно ополаскивается тёплой водой.
  • Завершающим обязательным действием является вытирание ванны тканевой хорошо впитываемой влагу салфеткой насухо.

Такие действия предотвратят появления пятен и налёта, а также, скорее всего, и вовсе избавят от необходимости применения химических моющих средств. Благодаря этому ванна прослужит значительно дольше, не потеряв своего первоначального свежего вида.

Узнайте, как удалить грибок в ванной комнате, а также ознакомьтесь с готовыми составами и народными средствами, из нашей новой статьи на нашем портале.

Особенности ухода за ванной с гидромассажем

Ежедневная очистка ванны, оснащённой гидромассажем, осуществляется практически так же, как и обычной акриловой ёмкости. Тем не менее, с определённой регулярностью (один раз в неделю или в месяц, в зависимости от частоты использования ванны), необходимо производить и более расширенную уборку, включающую несколько специфических операций.

 Очистка ванны, оснащённой функцией гидромассажа.Очистка ванны, оснащённой функцией гидромассажа.
  • Ванна заполняется тёплой водой, так, чтобы она покрывала все гидромассажные сопла.
  • Затем в воду вливается концентрированный лимонный сок (100 г) или раствор лимонной кислоты, приготовленный из 100 г кристаллов, растворенных в 200 мл тёплой воды.
  • Ванна оставляется с водой на 2÷3 часа, после чего вода сливается.
  • Со дна ванны губкой собирается остаток раствора, и им ещё раз протираются её стенки.
  • Далее, берутся ватные палочки — они потребуются, чтобы очистить отверстия сопел гидромассажной системы. Палочку смачивают перекисью водорода и проникают ей, насколько это возможно, внутрь отверстий, таким образом прочищая их от известкового налёта.
  • Завершающим этапом идёт ополаскивание всей ванны тёплой водой и вытирание её насухо мягкой салфеткой.

Этот процесс не только очистит акриловые поверхности, сохранит свежий вид и стенок, и металлических деталей, но и поможет обеспечить длительную эффективную работу гидромассажной системы.

Чтобы не допускать загрязнения гидромассажных трубок, рекомендуется производить профилактические мероприятия, состоящие из следующих действий:

  • Перед тем как принимать ванну, она заполняется водой, и на 5÷7 минут включается система гидромассажа, даже если её не планировалось использовать. Подобным образом можно предотвратить застой воды во внутренних каналах, в результате которого часто и возникают известковые отложения.
  • Один раз в месяц необходимо производить более интенсивную процедуру очистки. Для этого ванна заполняется водой, в которую добавляется специальное чистящее средство, и в таком включённом состоянии она оставляется на 10÷20 минут. После этого вода сливается, ванна ополаскивается и вытирается насухо.

Как избавиться от мелких царапин и других повреждений?

Даже при самой аккуратной эксплуатации акриловых сантехнических изделий, часто не удаётся избежать царапин на их поверхности. В таких повреждениях могут собираться известковые и ржавые отложения, которые сразу визуально выделяют эти участки на общем фоне. Чтобы избавиться от царапин можно применить один из существующих способов их удаления.

Зашлифовка царапин с помощью наждачной бумаги с мелким абразивомЗашлифовка царапин с помощью наждачной бумаги с мелким абразивом
  • Неглубокие царапины можно удалить так же, как и одиночные пятна ржавчины, обработав поверхность мелкозернистой (Р240÷Р280) наждачной бумагой. После чего выровненный участок отшлифовывается специально предназначенной для акрила полиролью.
Полироль для акриловой поверхности.Полироль для акриловой поверхности.
  • Иногда бывает вполне достаточно нанести на царапины только полироль, без применения предварительного абразивного воздействия. Полировочная паста наносится и интенсивно втирается в поверхность с помощью куска войлока круговыми движениями. Процесс продолжают до максимального сглаживания царапин и наносимого состава.
Ремонтный комплект для восстановления повреждённых акриловых сантехнических приборов.Ремонтный комплект для восстановления повреждённых акриловых сантехнических приборов.
  • При возникновении глубоких повреждений поможет ремонтный комплект для акриловых сантехнических аксессуаров. Его рекомендуется приобретать вместе с ванной, чтобы сразу же подобрать наиболее близкий оттенок цвета — позднее сделать это будет намного сложнее. Набор включает в себя пастообразный акриловый состав, который затвердевает при его нанесении на поверхности ванны. Пастой заполняют царапины и втирают её круговыми движениями с помощью войлока до приобретения гладкости.
Процесс ремонта акриловой ванны с применением шпатлёвки.Процесс ремонта акриловой ванны с применением шпатлёвки.
  • Пастообразным акрилом можно даже отремонтировать сквозные отверстия в литой модели ванны, которые могут также образоваться по той или иной причине. Чтобы выполнить эту процедуру, сначала необходимо очистить ремонтируемый участок. Далее, с внешней стороны ванны наклеивается несколько слоёв качественного водостойкого скотча, который станет барьером для пасты. Затем образовавшееся отверстие заполняется жидким акрилом и выравнивается с помощью пластиковой лопатки. После чего заплатку необходимо оставить до застывания пасты на два — три часа. Далее, акрил шлифуется мелкозернистой наждачной бумагой и полируется куском войлока.
  • Способ заливки акрилом может быть использован и в том случае, когда приходится удалять глубоко въевшиеся пятна, после ликвидации которых, на поверхностях остаются углубления.
  • Другой вариант заделывания сквозных пробоин в ванне предполагает использование полимерной шпатлёвки. Ею заполняют образовавшееся отверстие и дожидаются её полного просыхания. После чего сверху шпатлёвки наносится акриловая паста и выравнивается лопаткой. Высохшая паста обрабатывается мелкозернистой наждачной, затем, при необходимости, окрашивается, и завершающим действием становится чистовая полировка участка до идеально гладкого состояния.

Вполне очевидно, что при желании хозяевам по силам не только проводить обычные уборки, но и выполнять восстановление повреждённых участков акриловых ванн, не прибегая к помощи мастера.

Цены на популярные акриловые ванны

 

Несколько полезных рекомендаций по уходу за акриловыми ванными

В заключение публикации, подводя итоги всего сказанного выше, можно несколько повториться, выделив ключевые моменты, которые важно учитывать при уходе за акриловыми сантехническими приборами:

  • Чтобы не заниматься весьма трудоёмкой, отнимающей немало времени и сил работой по очистке сильнозагрязнённой ванны, мыть её рекомендуется регулярно, после каждого приёма водных процедур.
  • Необходимо следить за исправностью водопроводных кранов и душа — нигде не должно быть даже признаков протечек воды. Все смесители следует плотно закрывать после каждого использования. Так можно избежать появления трудноудаляемых жёлтых ржавых пятен на поверхности чаши.
  • Рекомендуется ополаскивать ванну горячей водой, которая придаст акрилу блеск.
  • Перед тем как выбрать и применить новое моющее средство, следует внимательно изучить его состав и способ применения. Протестировать его лучше на незаметном небольшом участке поверхности.
  • Необходимо оберегать акриловые поверхности от механических воздействий, от контакта с острыми предметами, а также от когтей животных.
  • Нельзя ставить на дно ванны табурет, используя его, например, в качестве подставки для таза во время ручной стирки. Точечное давление его ножек непременно приведёт к повреждению акриловой поверхности.
  • В случае попадания на поверхность красящих веществ, их следует удалять сразу, не давая им впитаться в поры полимера. Въевшиеся пятна удалить будет весьма затруднительно.
  • Рекомендуется держать ванну в сухом состоянии, поэтому её желательно каждый раз после использования и проведения уборки протирать мягкой, хорошо впитывающей влагу тканью.

*  *  *  *  *  *  *

Если хорошо уяснить все нюансы ухода за акриловыми ваннами и их мелкого ремонта, будет легче справиться и с профилактикой, и с очисткой. Главное, не наделать в этом деле трудно исправляемых ошибок. Кроме того, как знать, не исключено, что, ознакомившись с информацией, некоторые владельцы жилья, подумывающие заменить свою стальную или чугунную ванну на модную акриловую модель, и вовсе откажутся от этой затеи.

В завершение – познавательный видеосюжет, посвящённый уходу за акриловой ванной.

Видео: Как избавиться от желтизны в акриловой ванне

как и чем ее чистить

Содержание:

  1. Уход за акриловой ванной
  2. Этапы ухода за акриловой ванной
  3. Проводим дезинфекцию
  4. Как предупредить загрязнения чаши из акрила?

Популярность акриловых ванн возрастает год от года. Если ещё десять лет назад эта новинка была доступна лишь обеспеченным людям, то сегодня производители предлагают модели для покупателей с разным достатком. Преимуществ у чаш из акрила множество, в их числе и небольшой вес, и простота монтажа, и действительно роскошный вид. Не стоит забывать и о том, что акрил – материал нейтральный, он не подвержен воздействию микроорганизмов, а значит нет никакой угрозы, что на поверхности ванны обоснуются опасные бактерии. Широко распространено мнение, что акриловые ванны и поддоны не подвержены и загрязнениям, однако оно верно лишь отчасти – наслаждаться ослепительным блеском и восхитительной гладкостью акриловой модели позволит регулярный уход за поверхностью и деликатное отношение к оборудованию.

Перед тем, как обсуждать, чем чистить акриловую ванну, нужно сказать, что загрязнения могут иметь различную природу. Чаще всего пятна и налёт появляются из-за недостаточно тщательного ежедневного ухода. Жёсткость водопроводной воды, использование средств для тела во время купания, да и сами гигиенические процедуры способствуют формированию грязи. После каждого мытья на поверхности образуется тонкий, незаметный глазу и даже не всегда ощутимый слой, состоящий из известковых отложений, частиц кожи, мыльной пены. Именно поэтому каждый вечер стоит обмывать ванну тёплой водой, а затем вытирать насухо. Эта короткая и необременительная процедура существенно облегчит чистку ванны. Кроме того, в чистой ванне мытье гигиеничнее и приятнее.

Уход за акриловой ванной

Как и любой предмет обстановки, бытовой прибор и сантехническое оборудование, акриловая ванна нуждается не только в профилактическом, но и в специальном очищении, которое обязательно нужно проводить раз-два в месяц в зависимости от состояния. При этом следует учитывать, что акрил, несмотря на свою прочность, - материал полимерный, следовательно, при неосторожном или грубом обращении на нём могут появиться царапины. По этой причине категорически не рекомендуется применять для чистки акрила губки с металлизированной поверхностью, грубые щётки и любые предметы с острыми краями. Что касается чистящих средств, то нужно сразу же исключить порошки с абразивными частицами, в том числе соду, и агрессивные химические составы. Все перечисленные аксессуары и средства могут поцарапать ванну, вызвать появление трещин, изменить цвет покрытия, а в худшем случае даже растворить верхний слой. Во время мытья лучше включать тёплую воду, а не горячую - высокая температура негативно влияет на состояние акрила.

Теперь перейдём к вопросу, какие же способы чистки понравятся вашей акриловой ванне. Для ухода за поверхностью лучше всего использовать специализированные средства для акрила в виде гелей или жидкостей, мягкие губки, резиновые скребки для удаления сложных пятен. Завершать очищение следует, протирая чашу сухим полотенцем. Эти помощники позволят вам избавиться от любой грязи, но не нанесут вреда ванне.

Этапы ухода за акриловой ванной

Удаляем простые пятна

Начинают очищение ванны с ополаскивания тёплой водой, которая смягчит грязь и облегчит её удаление. После наносят чистящее средство и выжидают 10-15 минут. Не нужно пытаться сразу же оттирать пятна и налёт – спустя указанное время очищающий состав провзаимодействует с загрязнениями и растворит их. Большинство следов после обработки гелем или кремом с лёгкостью удаляются с помощью губки. Старайтесь не усердствовать и не тереть ванну с чрезмерными усилиями, так как слишком сильное механическое воздействие может привести к возникновению дефектов на поверхности.

Боремся с известковым налётом и ржавчиной

После того, как вы избавились от легкоудаляемых загрязнений, изучите поверхность на предмет наличия локальных известковых отложений, пятен ржавчины, мест, которые приобрели желтоватый оттенок. С такими загрязнениями справляются проверенные домашние средства – уксус и лимонный сок. Для начала примените кратковременную обработку – нанесите на места со ржавчиной и солевыми отложениями столовый уксус или сок лимона на 20-25 минут. После хорошо потрите их мягкой щёткой или попробуйте удалить следы резиновым или скребком. Если пятна не слишком старые, то этот способ вам поможет.

Избавляемся от застарелых следов

Если грязь на поверхности застарелая, то придётся провести следующую процедуру: заполните ванну тёплой водой, добавьте полтора литра уксуса или высыпьте пару пакетиков лимонной кислоты. Хорошо перемешайте воду. Если вы воспользовались лимонной кислотой, то делайте это особенно тщательно – нерастворившиеся частицы могут при дальнейшей чистке повредить поверхность. Оставьте воду в ванной на несколько часов или на ночь. После того, как вода будет спущена, хорошо протрите губкой или щёткой поверхность, уделяя внимание тем местам, где были грязные пятна, а затем ополосните чистой водой и протрите. Такая обработка чаши гарантирует, что ваша ванна заблестит как новая.

Возвращаем поверхности белизну

Обработка уксусом позволяет избавиться и от желтизны. Желтоватый налёт появляется на всей сантехнике из-за низкого качества водопроводной воды. Если в течение длительного времени не удалять его, то поверхность может потерять белый цвет безвозвратно. Ни в коем случае не применяйте для очищения агрессивные отбеливающие средства – эти составы очень едкие и способны разрушить акрил. Многих хозяек волнует, можно ли чистить чашу средствами, содержащими кислоты или аммиак. Ответ на этот вопрос отрицательный. Такая химия крайне негативно воздействует на акрил и вообще небезопасна для здоровья.

Ухаживаем за гидромассажной ванной

Если в вашем санузле установлена ванна с гидромассажем, то на её мытье придётся потратить дополнительное время. Гидромассажная система включает множество шлангов и труб, которые при ненадлежащем уходе и недостаточной вентиляции быстро засоряются и становятся источником бактерий. Уход за гидромассажной ванной необходимо проводить чаще, желательно раз в неделю. Шланги следует очищать с применением специальных средств, а затем тщательно промывать водой.

Проводим дезинфекцию

Дезинфекцию домашнего сантехнического оборудования многие не считают обязательным. В действительности дезинфицировать поверхность раковины, унитаза, ванной или душевой кабины совершенно необходимо. Даже если этим оборудованием пользуется один человек, со временем в швах, стыках или других местах, куда трудно добраться, может появиться плесень или развиться очаг бактерий. Кроме того, купание – это процедура гигиеническая, способствующая очищению тела, а значит и оборудование для этой процедуры должно быть абсолютно чистым.

Дезинфицирование ванны не потребует никаких усилий, но для такой тщательной уборки нужно будет приобрести чистящий состав с дезинфицирующими свойствами. Ванна заполняется водой, в которую добавлено средство, а спустя несколько минут вода спускается. Завершается очищение обильным промыванием тёплой водой для полного удаления состава со стенок и дна чаши. Альтернативный вариант дезинфицирующей обработки – воздействие паром. Горячий пар убивает любые микроорганизмы и размягчает даже самые застарелые пятна, поэтому этот способ хорош и для регулярной уборки. Однако такая чистка предполагает наличие пароочистителя либо вызов специалистов, что может обойтись недешево.

Для акриловой ванны достаточно ежегодной профилактической дезинфекции, поскольку акрил – материал синтетический и инертный, не способствующий размножению бактерий и грибков.

Как предупредить загрязнения акриловой ванны

Белоснежная блестящая сантехника – это настоящее украшение ванной комнаты. Но поддержание чистоты в санузле – задача, которую надо решать постоянно. К сожалению, мы не всегда ухаживаем за оборудованием, иногда усталость побеждает желание убраться, а иногда не хватает времени даже на пятиминутное очищение. Для того, чтобы ваша акриловая ванна меньше загрязнялась, а вам приходилось чуть реже её мыть, используйте такие решения:

  • раз в месяц обрабатывайте чашу, используя полироль для мебели, желательно с небольшим содержанием воска, а после промывайте водой. Такая полировка придаст акрилу красивый блеск и гладкость, но дело здесь не только в эстетике. На гладкой поверхности в меньшей степени задерживаются загрязнения, поэтому налёт будет формироваться медленнее;
  • если вы не хотите применять химические препараты, то старательно отполируйте ванну сухой тряпкой. Помните, что нужно использовать только мягкие материалы и не прикладывать много усилий, чтобы не вызвать повреждений акрила. Хорошо отполированный всухую акрил также приобретает отменную гладкость и не так активно загрязняется.

Акриловые ванны давно уже перестали носить статус новинок и с каждым днём становятся всё более востребованы. Не последнюю роль в этом играет и незамысловатый уход, который требуют модели из акрила. Затрачивая менее часа в неделю на очищение, вы добьётесь идеального состояния своей ванны.

Как выбрать лучшее средство для чистки акриловых ванн?

Главная » Быт и уют » Средство для чистки акриловых ванн: виды бытовой химии и подручных средств

Правильно выбранное средство для чистки акриловых ванн – это залог не только чистой, но и красивой ванны. В противном случае, можно испортить изначально идеально гладкую поверхность, поскольку акрил – не самый прочный и устойчивый материал.

Особенности ухода за акриловой ванной

Акриловые ванны уверено вошли на рынок и заняли лидирующее положение, потеснив с пьедестала старый добрый чугун. Сделать этого им помогли такие свойства материала, как:

  • Гибкость, позволяющая создавать ванны самых различных форм;
  • Легкость. Это далеко немаловажный факт, учитывая, насколько трудоемким является процесс транспортировки и установки чугунных изделий;
  • Антибактериальный эффект;
  • Хорошая теплоизоляция. Это позволяет ванне дольше удерживать тепло воды;
  • Выбор цвета. Конечно, это не самый необходимый критерий, но очень приятный, если хочется оформить всю ванную комнату в определенном цветовом решении.

Акриловая ванна

Казалось бы, при таких характеристиках выбор должен быть очевиден: акриловая ванна –лучший вариант. Но стоит уточнить, что у нее есть и определенные недостатки, которые при должном уходе могут совсем не беспокоить хозяев ванны. Их всего два:

  • Прочность. В сравнении с чугуном, акрил значительно уступает в этой позиции. Конечно, не стоит переживать, что ванна сломается от стандартных механических воздействий при ее использовании. Но упавший с высоты достаточно тяжелый предмет вполне может ее повредить;
  • Истирание. В некоторых случаях можно заметить, что после определенного периода использования ванны, на ее поверхности могут появиться неэстетичные царапины.

Последний пункт происходит вследствие того, что хозяйки чистят акрил средствами, не подходящими для этого. К сожалению, акрил при всех его достоинствах не устойчив к химическому воздействию, и поэтому настоятельно рекомендуется  внимательно изучить информацию, как правильно за ним ухаживать.

Таким образом, среди особенностей ухода за акриловой ванной можно выделить следующие правила:

  • Лучше использовать жидкие и гелеобразные чистящие средства;
  • На акриловой ванне также может образоваться подтеки ржавчины. По этой причине стоит тщательно закрывать кран и следить, чтобы вода не скапливалась в определенных местах;
  • После чистки ванны необходимо удалить все остатки средства обильной струей воды и протереть поверхность сухой тряпкой.

При правильном уходе, акриловая ванна будет оставаться красивой и функциональной на протяжении очень долго времени.

Бытовая химия

Выбор чистящих средств на сегодня настолько обширен, что каждый может найти подходящий для себя вариант. Между собой они различаются по различным критериям:

  • Состав;
  • Форма выпуска;
  • Метод нанесения;
  • Цена.

Стоит учитывать, что не все средства смогут справиться с въевшейся грязью, поэтому перед покупкой стоит прежде оценить состояние ванны.

Cif

Данная марка известна многим хозяйкам, благодаря своему удобству, ведь оно представляет собой универсальное средство, которому под силу очистить раковину, ванну, кафель и любую другу поверхность.

Преимущества:

  • Отсутствие абразивных компонентов;
  • Доступная цена;
  • Удобство использования. Средство можно приобрести во флаконе с пульверизатором, при помощи которого равномерно наносится на поверхность.

Cif – одно из средств для чистки акриловых ванн

Недостатки:

  • Несмотря на свою неплохую результативность, сильно застарелые пятна Cif может не осилить;
  • Требуется приложить немного усилий для того, чтобы получить действительно хороший эффект.

В целом, это одно из наиболее популярных чистящих средств среднего ценового сегмента. Встретить его можно практически в каждом магазине.

Акрилан

Данное средство представляет собой не порошок и не гель, а пену. После его использования, на  поверхности ванны образуется невидимая глазу пленка, которая способствует в дальнейшем отталкиванию грязи. Средство не разрешено смешивать с другими чистящими веществами.

Акрилан

Преимущества:

  • Справляется не только с поверхностным загрязнением, но и с застоялым налетом и ржавчиной;
  • Оказывает антисептический эффект, поскольку способен устранять даже грибки;
  • Выпускается во флаконе с пульверизатором, что делает его применение очень простым и быстрым.

Недостатки:

  • Специфический запах, который может показаться резким;
  • Цена выше многих аналогичных средств.

Золушка

Одно из самых доступных по цене средств для ухода за акриловой ванной. Использовать его можно для чистки не только ванны, но и кафельной плитки.

Золушка для акриловых ванн

Преимущества:

  • Низкая стоимость;
  • Достаточно эффективно справляется с различными видами загрязнений;
  • Имеет пульверизатор.

Недостатки:

  • Обладает едким запахом;
  • Может не справиться с некоторыми трудновыводимыми пятнами.

Спрей freshbubble от  производителя Леврана

Спрей для чистки freshbubble представляет собой профессиональное средство, которое разработано для ухода именно за акриловой поверхностью. Это отличает его от иных средств, которые чаще всего представляют собой универсальный вариант.

Спрей freshbubble

Преимущества:

  • Средство обладает полностью органическим составом, а значит, не вредит природе;
  • Обладает антибактериальным эффектом;
  • Удаляет даже самые стойкие пятна;
  • Создает на поверхности грязеотталкивающую пленку.

Недостатки:

  • Цена выше, чем у представителей среднего сегмента.

Frosch

Для тех хозяек, кто предпочитает использовать средства бытовой химии с максимально органическим составом, рекомендуется присмотреться к марке Frosch. Его активным компонентом выступает виноградная кислота, которая  обладает намного меньшим агрессивным характером в сравнении с химическими веществами.

Frosch для акриловых ванн

Преимущества:

  • Наиболее натуральный состав, который не оказывает негативного воздействия на организм при контактировании с ним;
  • Приятный запах;
  • Подходит не только для чистки акриловых поверхностей, но и для эмалированных.

Недостатки:

  • Старые въевшиеся пятна могут быть не под силу данному средству.

Подручные средства

Далеко не все люди любят использовать средства бытовой химии, поскольку в них содержатся не самые полезные компоненты, а товары с полностью органическим составом не всегда могут быть по карману. В таком случае, решением может стать применение народных методов по уходу за акриловой поверхностью.

Лимонная кислота

Лимонная кислота давно известна своим отбеливающим эффектом, за что получила широкое применение в сфере бытовой химии и даже косметологии. В данном случае она также может обеспечить отбеливающий эффект и избавить поверхность от известкового налета.  Для этого достаточно набрать воду в ванну. Она должна быть достаточно горячей, но не кипяток. В воду высыпается пакетик лимонной кислоты. Время процедуры – 2 часа. После чего ванна тщательно промывается чистой водой и вытирается мягкой тряпочкой.

Сода и мыло

При помощи данных двух компонентов делается раствор, который можно наносить на загрязненные участки. Сделать это можно, например, губкой. Для того чтобы раствор подействовал, необходимо оставить его на 20 минут, после чего тщательно промыть струей воды.

Раствор из соды и мыла – одно из средств для чистки акриловых ванн

Перекись водорода и нашатырь

Раствор из нашатыря и перекиси осуществляется в пропорциях 1:1. Полученное средство по аналогии с предыдущим вариантом, наносится точечно на места загрязнений при помощи губки. По истечении нескольких минут можно промыть ванну и протереть ее. Такое средство имеет хороший эффект даже при въевшихся пятнах.

Уксус

Уксус обладает ярко выраженным разъедающим характером, что отлично подходит в вопросе чистки предметов быта. Для того чтобы с его помощью почистить ванну, необходимо заполнить ее горячей водой и залить 1 литр столового уксуса. Через 12 часов ожидания ванну нужно тщательно промыть, чтобы не осталось остатков вещества. Уксус также отлично подходит для избавления от ржавчины.

Зубная паста

Возможно это не самое эффективное средство в борьбе с сильными загрязнениями, но точно одно из самых простых и доступных. На место загрязнения наносится небольшое количество пасты и слегка растирается. Примерно через полчаса необходимо промыть пятно чистой водой. Данный метод подразумевает использование только пасты с отбеливающим эффектом.

Как проводится дезинфекция?

Дезинфекция – необходимая процедура, которая позволяет уничтожить грязь и бактерии, скопившихся  в микротрещинах и труднодоступных местах. Для этой цели используются специальные антисептические средства. Перед покупкой обязательно стоит ознакомиться с инструкцией и убедиться, что выбранное средство подходит для акриловых поверхностей.

При дезинфекции акриловых ванн для защиты кожи рук, обязательно используйте резиновые перчатки

Процедура проводится следующим образом:

  • Ванна наполняется прохладной водой, примерно 20-22 градуса;
  • В воду добавляется дезинфицирующее средство. Дозировка рассчитывается, согласно инструкции;
  • При помощи подручного средства вода с добавленным антисептиком тщательно перемешивается и оставляется в таком положение на 10  минут;
  • По истечении времени вода сливается, а ванная тщательно промывается. Необходимо убедиться, что все остатки средства были удалены;
  • Чистую ванну достаточно протереть сухой тряпкой и ее снова можно использовать.

Поскольку дезинфицирующие средства обладают агрессивным характером воздействия, данную процедуру проводят не часто, достаточно 1 раза в год. Для защиты кожи рук, обязательно использование резиновых перчаток. В противном случае, может возникнуть сильно раздражение.

Профилактика загрязнения

Для того чтобы акриловая ванна служила как можно дольше, необходимо следовать советам по профилактики ее загрязнения и повреждения. Они заключаются в следующем:

  • После каждого использования ванны, необходимо промывать ее при помощи обильной струи воды и мягкой тряпочки;
  • Ванна должна быть сухой. Для этого после промывания, ее желательно протереть сухой тряпочкой;
  • Не стоит ежедневно мыть ванну с использованием чистящих средств. Это достаточно делать 1-2 раза в неделю;
  • При купании животных стоит использовать прорезиненный коврик для того, чтобы не допустить царапание поверхности когтями. По этой же причине не стоит помещать в ванну металлические тазики и прочие царапающиеся предметы;
  • Замачивать белье в ванне не рекомендуется.

Такие несложные правила сохранят ванну чистой, гладкой и эстетичной.

Чем нельзя чистить ванну из акрила

Если в доме имеется акриловая ванна, то помимо информации о вариантах чистящих средств, необходимо знать, что нельзя использовать при уходе за ней. В первую очередь стоит приобретать только средства для чистки акриловых ванн. Это могут быть и универсальные средства, которые могут подходить для акрила. По этой причине перед покупкой важно прочитать инструкцию и убедиться, что средство удовлетворяет данному пункту. Помимо этого не стоит использовать:

  • Мочалки и щетки с жесткой щетиной, которые могут поцарапать поверхность;
  • Порошкообразные средства;
  • Чистящие средства, в составе которых имеются агрессивные кислоты, ацетон, аммиак;
  • Растворители;
  • Крутой кипяток. Мыть ванну можно горячей водой, но не кипятком.

При игнорировании правил ухода и использовании нерекомендуемых средств, акриловая ванна может в короткие сроки потерять ухоженный вид, так как на ней могут образоваться царапины и потертости.

Влияние дезинфицирующих средств на механические свойства ортодонтических акриловых материалов

Объектив . Протоколы инфекционного контроля в стоматологии требуют дезинфекции ортодонтического акрила. Специальных продуктов для ортодонтического акрила нет. Целью этого исследования было изучить влияние химических дезинфицирующих средств на механические свойства ортодонтических акриловых материалов. Материалы и методы . Было изготовлено 260 образцов для испытаний двух ортодонтических акриловых материалов холодного отверждения.Были протестированы три химических дезинфицирующих средства: Impresept, D050 Instru-Gen и Stammopur DR. Образцы для испытаний хранили в дистиллированной воде и разделяли на группы для испытаний. Были измерены модуль упругости, прочность на изгиб, макротвердость, микротвердость, средняя шероховатость и изменение цвета. Результаты . Дезинфицирующие агенты не оказали значительного влияния на модуль упругости. Значения варьировались от 1783,80 ± 163,80 МПа (бесцветный форестакрил) до 2474,00 ± 135,00 МПа (ортокрил зеленый) после хранения в дистиллированной воде.Дезинфицирующие средства не оказали значительного влияния на прочность на изгиб. Значения варьировались от 18,64 ± 1,59 Н / мм 2 (форестакрил бесцветный) до 25,64 ± 1,43 Н / мм 2 (ортокрил зеленый) после хранения в дистиллированной воде. Бесцветный ортокрил показал снижение макротвердости после дезинфекции (Stammopur DR (p≤0,001), D050 Instru-Gen (p≤0,037)). Дезинфекция Orthocryl green D050 Instru-Gen (p <0,001) и бесцветного Forestacryl с Impresept (p≤0,001) привела к снижению макротвердости.Микротвердость бесцветного Ортокрила значительно изменилась после дезинфекции D050 Instru-Gen (p≤0,001). Микротвердость бесцветного Forestacryl увеличивалась (Impresept (p≤0,039)) и снижалась (Stammopur DR (p≤0,006) Instru-Gen (p≤0,001)) после дезинфекции. Средняя шероховатость существенно не изменилась (Ортокрил бесцветный). Бесцветный форестакрил продемонстрировал значительные изменения после дезинфекции Stammopur DR (p≤0,05). Это также верно для дезинфекции Orthocryl green и Forestacryl pink с помощью Instru-Gen (p≤0.05). Дезинфекция не оказала значительного влияния на изменение цвета. ΔE-значения находились в диапазоне от 1 до 2. Выводы . Дезинфекция некоторых ортодонтических акриловых материалов вызвала значительные изменения определяемых параметров. Изменения коснулись применяемого дезинфицирующего средства и протестированного ортодонтического акрила. Дальнейшие исследования должны подтвердить влияние длительных интервалов дезинфекции. Таким образом, от производителей ортодонтического акрила было бы желательно рекомендации по выбору соответствующих дезинфицирующих средств.

1. Введение

Ротовая полость является резервуаром условно-патогенных и патогенных микроорганизмов. Во время обычной ортодонтической и стоматологической практики существует высокий риск перекрестного заражения и инфекций, которые могут даже вызвать системные инфекции [1]. Происходит передача патогенов от пациентов членам ортодонтической бригады и наоборот. Передача патогенов также может происходить от пациента к пациенту без вмешательства ортодонтической бригады. Эти пути передачи включают загрязненные поверхности, инструменты, ортодонтическое оборудование или зубные протезы.Как правило, основными переносчиками перекрестной передачи являются слюна и кровь пациента [2, 3]. В целом, риск инфицирования может быть высоким для всех участников ортодонтического лечения. Сюда входят пациенты, медработники, ассистенты-ортодонты и лаборанты [4].

Отсутствие надлежащей дезинфекции ортодонтического оборудования может увеличить риск передачи инфекционных заболеваний и факультативных патогенных микроорганизмов. Зубные техники показывают более высокий уровень заражения гепатитом B по сравнению со средней популяцией [5, 6].Следовательно, существует необходимость сократить возможные пути передачи патогенов в ортодонтических и стоматологических условиях.

Необходимость дезинфекции ортодонтического оборудования до и после контакта с пациентом теоретически является обязательной [6, 7]. Ортодонтическое оборудование контактирует со слизистыми оболочками, поэтому перед обращением с ними или регулировкой их необходимо очистить от всех микроорганизмов. Эти предметы требуют дезинфекции высокого уровня с использованием химических дезинфицирующих средств. Целью процесса химической дезинфекции является инактивация болезнетворных микроорганизмов без воздействия на структуру материала зубных протезов и ортодонтических акриловых материалов [8].Конечной целью процесса дезинфекции ортодонтического оборудования должно быть устранение достаточного количества патогенов для предотвращения передачи инфекции [6, 9, 10].

Средств, специально предназначенных для дезинфекции ортодонтического оборудования, не существует. Однако обычно используются дезинфицирующие средства, первоначально изготовленные для дезинфекции зубных слепков. В большинстве случаев альдегиды используются для дезинфекции ортодонтического оборудования и акриловых протезов. Дезинфицирующий эффект протезов с использованием альдегидов является адекватным, хотя в паспортах безопасности материалов нет прямой информации относительно дезинфекции ортодонтического оборудования и акриловых протезов [11].

Таким образом, цель этого исследования in vitro состояла в том, чтобы определить влияние различных химических дезинфицирующих средств на свойства различных ортодонтических акриловых материалов. В ходе исследования были использованы четыре различных ортодонтических акрила и три дезинфицирующих средства. Было определено влияние процесса химической дезинфекции на модуль упругости, прочность на изгиб, макротвердость, микротвердость, шероховатость поверхности и изменение цвета ортодонтических акриловых материалов.

Гипотеза данного исследования состоит в том, что исследуемые химические дезинфицирующие средства оказывают значительное влияние в смоделированных условиях практики (одноразовая дезинфекция) на модуль упругости, прочность на изгиб, макротвердость, микротвердость, среднюю шероховатость и изменение цвета различных ортодонтических акриловых материалов.

2. Материалы и методы
2.1. Образцы для испытаний и дезинфицирующие средства

Для этого исследования было изготовлено 260 образцов, состоящих из двух различных ортодонтических акриловых материалов.Использовали полимер холодного отверждения Orthocryl зеленого и бесцветного цветов (Dentaurum, Ispringen, Германия) и полимер холодного отверждения Forestacryl розового и бесцветного цветов (ForestaDent, Пфорцхайм, Германия). Образцы для испытаний были спроектированы призматически в соответствии с DIN EU ISO Norm 3167: 2003 с использованием технологии распределения и были сконструированы с размерами 80x10x4 мм. Все поверхности образцов для испытаний шлифовали и полировали с использованием гранул размером 220, 320, 800, 1200 и 2400 (RotoPol-35, Struers GmbH, Виллих, Германия) (Рисунок 1).


Испытательные образцы были распределены по тестовым группам. Для обеспечения стандартизованной водонасыщенности и максимальной абсорбции воды 198 испытуемых образцов помещали при 22 ° C в дистиллированную воду на 24 часа и, наконец, инкубировали при 22 ° C (WTC Binder, Туттлинген, Германия) в аэробных условиях в течение 24 часов. Наконец, влияние дезинфицирующих агентов, состоящих из Impresept (3M Espe, 3M Company, Сент-Пол, Миннесота, США), Stammopur DR (Dr H Stamm, Берлин, Германия) и D 050 Instru-Gen (ad-Arztbedarf GmbH , Frechen, Германия), по модулю упругости (E-Modulus), прочности на изгиб, макротвердости, микротвердости, средней шероховатости и изменению цвета испытуемых образцов.Активные компоненты Impresept - оксалальдегид и 1,5-пентандиал. Эти активные компоненты входят в химическую группу альдегидов. Дидецилдиметиламмонийхлорид (четвертичный аммониевый катион) и 1,5-пентандиал упомянуты в качестве активных компонентов Stammopur DR. Активными веществами D 050 Instru-Gen являются перборат натрия и бензоат натрия с химическим действием окислительных соединений. Используемые дезинфицирующие агенты были приготовлены с учетом концентраций и времени воздействия согласно инструкциям производителя для кондиционирования испытуемого образца.Impresept дезинфицировал исследуемый образец в течение десяти минут и использовался с концентрацией 100%. Дезинфицирующий раствор Stammopur использовался со временем воздействия 60 минут и был приготовлен в концентрации 3%. Дезинфицирующий раствор D 050 Instru-Gen был приготовлен с концентрацией 2%, и время дезинфекции испытуемых образцов составляло 60 минут. Сухое хранилище, с одной стороны, и дистиллированная вода, с другой стороны, использовались в дополнение к дезинфицирующим агентам в качестве контрольных групп. Образцы для испытаний, которые использовались в группе с дистиллированной водой, хранили в течение 60 минут в дистиллированной воде.По истечении периода хранения (контрольная группа сухого хранения) и периода дезинфекции (включая испытуемые образцы контрольной группы с дистиллированной водой) испытуемые образцы промывали дистиллированной водой в течение одной минуты и сушили вручную. Затем было исследовано влияние на модуль упругости, прочность на изгиб, макротвердость, микротвердость, среднюю шероховатость и изменение цвета.

2.2. Модуль упругости и прочность на изгиб

Модуль упругости и прочность на изгиб были измерены с использованием испытания на трехточечный изгиб в соответствии с DIN EN ISO 178: 2003.

120 образцов были распределены по группам. Образцы для испытаний первой опытной группы состояли из хранимой сухой контрольной группы. Единственной жидкостью для хранения второй опытной группы была дистиллированная вода. Эти две тестовые группы были использованы в качестве контрольных. В третьей тестовой группе в качестве дезинфицирующего средства использовали Импресепт. В четвертой опытной группе исследовали влияние Stammopur DR на испытуемые образцы. Пятая тестовая группа использовалась для воздействия D 050 Instru-Gen на тестируемые образцы.После подготовки каждого образца ортодонтического акрила для испытаний были проведены испытания на трехточечный изгиб на машине Zwick (ZWICKI TMZW, Zwick GmbH & Co. KG, Ульм, Германия) (рис. 2).


Универсальная испытательная машина Zwick была сконструирована для проведения многочисленных испытаний материалов и конструкций. Исследуемые образцы для испытаний помещали в универсальную испытательную машину между зажимами и контрольным штампом. Каждый из испытанных образцов был установлен на двух опорных стойках диаметром 5 мм на расстоянии 64 мм друг от друга.Это расстояние было выбрано в 16 раз больше толщины образцов 4 мм. Плунжер применяли для приложения вертикальной силы максимум до 2 кН к центру испытуемого образца. Модуль упругости и прочность на изгиб были определены при скорости поперечной головки 2 мм / мин. Радиусы абатментов и плунжера 5 мм. Для определения модуля упругости и прочности на изгиб скорость испытания поддерживали на постоянном уровне 2 мм / мин. Анализ полученных данных проводился с использованием тестового и калибровочного программного обеспечения testXpert II (Zwick GmbH & Co.KG, Ульм, Германия).

2.3. Макротвердость

Макротвердость 60 образцов исследуемых ортодонтических акриловых полимеров холодного отверждения была измерена путем испытания твердости при вдавливании в соответствии с DIN EN ISO 2039-1 с использованием тестеров Instron Wolpert-Macro Hardness K-Testors 2524 (Wolpert Wilson Instruments, Пфунгштадт, Германия) (Рисунок 3).


Испытательная нагрузка варьируется от минимальной испытательной силы 49 Н до максимальной испытательной силы 961 Н, если иное не указано в специальной процедуре испытания.Метод измерения основан на измерении под нагрузкой для оценки полной деформации исследуемых ортодонтических акриловых материалов. Определенные значения твердости включают компоненты упругой, вязкоупругой и пластической деформации. Расстояние между каждым образцом для испытаний составляло 10 мм, чтобы избежать влияния соседних точек твердости.

2.4. Микротвердость

Микротвердость 40 испытательных образцов исследованных ортодонтических акриловых полимеров холодного отверждения была измерена с помощью устройства для испытания микротвердости (Fischerscope H 100C XYp, Helmut Fischer GmbH, Зиндельфинген, Германия).Процедура испытания проводилась в соответствии с DIN EN ISO 14577-1, 2 и 3. Микротвердость испытуемых образцов измерялась в зоне контроля, выбранной под микроскопом (система видео-измерения и контроля VMZM-40, 4H-Jena инжиниринг, Йена, Германия). Каждый отдельный образец для испытаний подвергался нагрузке со скоростью 50 мН / с до максимальной силы 1000 мН. Образец для испытаний выгружали через 20 секунд. Глубина отпечатка и напряжение индентора регистрировались одновременно и отображались графически.

2,5. Средняя шероховатость

Для проведения исследований средней шероховатости использовалось 40 образцов. Средняя шероховатость была определена в соответствии с DIN EN ISO 4287, 4288 и DIN 4760 с использованием устройства измерения поверхности (Perthometer PGK, Mahr GmbH, Геттинген, Германия) и устройства оценки (Perthometer S3P, Mahr GmbH, Геттинген, Германия) (рис. 4).


Измерения проводились до и после хранения в тестовой жидкости. Тестовый трек имел дистанцию ​​5.6 мм. Полная длина измерения составляла 4,0 мм. Длина волны отсечки составляла 0,8 мм и определяла переход от шероховатости поверхности к ряби.

2.6. Изменение цвета

Изменение цвета всех 260 испытуемых образцов исследуемых ортодонтических акриловых красок холодного отверждения было определено количественно спектрофотометрически (спектрофотометр VITA Easyshade, VITA Zahnfabrik, Бад Зекинген, Германия). Тестовые группы были загружены аналогом, как описано выше. Спектрофотометр был откалиброван перед сбором данных о цвете испытуемых образцов.Измерения проводились в десяти различных положениях каждого испытуемого образца до и после хранения в испытательной жидкости в течение определенного времени реакции исследуемых дезинфицирующих средств (рис. 5).


Для стандартизованного размещения спектрофотометра был изготовлен прозрачный присасывающийся шаблон толщиной 1,5 мм (Erkodur, Erkodent GmbH, Pfalzgrafenweiler, Германия). Белый картон использовался в качестве фона для образцов во время процесса измерения, чтобы гарантировать стандартизованные условия.

2.7. Статистика

Были рассчитаны средние значения, данные обработаны статистически. Статистический анализ выполняли с использованием SPSS 17.0 для Windows (SPSS Inc., Чикаго, Иллинойс, США). Было подтверждено нормальное распределение данных (критерий Колмогорова-Смирнова), а значимые различия между группами были обнаружены с помощью t-критерия Стьюдента и однофакторного дисперсионного анализа (ANOVA). Уровень значимости был установлен на уровне 5% (p≤0,05). Значимые результаты были проанализированы с помощью апостериорного теста (Бонферрони).

3. Результаты
3.1. Модуль упругости

Результаты представлены как средние значения ± стандартное отклонение (рис. 6). Данные модуля упругости испытуемых образцов, которые хранились в сухом виде, находились в диапазоне от 1720,10 ± 123,20 МПа (бесцветный форестакрил - минимальное значение) до 2494,80 ± 200,60 МПа (ортокрил зеленый - максимальное значение). Диапазон значений модуля упругости составлял от 1783,80 ± 163,80 МПа (форестакрил бесцветный - минимальное значение) до 2474,00 ± 135,00 МПа (ортокрил зеленый - максимальное значение) после хранения в дистиллированной воде.Форестакрил-розовый продемонстрировал снижение модуля упругости после дезинфекции. Малейшее изменение проявилось после дезинфекции Импрезептом (2005,17 ± 275,50 МПа) (p> 0,05). Максимальное изменение модуля упругости было обнаружено после дезинфекции с помощью Instru-Gen (1875,0 ± 149,87 МПа) (p> 0,05). Изменения модуля упругости после дезинфекции были обнаружены, но не значимы по сравнению с контрольными средними значениями сухих хранилищ и хранилищ в дистиллированной воде (рис. 6). Это верно для всех исследованных ортодонтических акрилов после дезинфекции (p> 0.05) (Рисунок 6).


3.2. Прочность на изгиб

Результаты представлены как средние значения ± стандартное отклонение (Рисунок 7). Для сопоставимых оценок прочности на изгиб предел текучести был установлен на уровне 1%. Измерения прочности на изгиб проводились с использованием всех различных ортодонтических акриловых материалов перед погружением в тестируемые дезинфицирующие средства и контрольную группу с дистиллированной водой. Данные испытаний прочности на изгиб варьировались от 18,09 ± 1,07 Н / мм 2 (Форестакрил бесцветный) до 25.79 ± 1,87 Н / мм 2 (ортокрил зеленый) сухих образцов для испытаний. Диапазон значений прочности на изгиб составлял от 18,64 ± 1,59 Н / мм 2 (форестакрил бесцветный) до 25,64 ± 1,43 Н / мм 2 (ортокриловый зеленый) после хранения в дистиллированной воде. Прочность на изгиб ортодонтических акриловых материалов снизилась в основном после дезинфекции, за исключением бесцветного Orthocryl с Impresept (26,37 ± 1,38 Н / мм 2 по сравнению с контрольными значениями: хранение в сухом виде 24,38 ± 2,01 Н / мм 2 / хранение в дистиллированной воде 25 .18 ± 1,23 Н / мм 2 ) и бесцветный форестакрил с Stammopur DR (20,14 ± 0,87 Н / мм 2 по сравнению с контрольными значениями: сухое хранение 18,09 ± 1,07 Н / мм 2 / хранение в дистиллированной воде 25,18 ± 1,23 Н / мм 2 ) и D 050 Instru-Gen (18,34 ± 2,04 Н / мм 2 по сравнению с контрольными значениями: хранение в сухом состоянии 18,09 ± 1,07 Н / мм 2 / хранение в дистиллированной воде 25,18 ± 1,23 Н / мм 2 ) (рисунок 7). Дезинфекционные агенты не оказали значительного влияния на прочность на изгиб (p≥0.05).


3.3. Макротвердость

Результаты представлены как средние значения ± стандартное отклонение (Рисунок 8). Значения макротвердости образцов для испытаний в сухом хранении варьировались от 132,42 ± 3,94 Н / мм 2 (Форестакрил розовый - минимум) до 154,43 ± 3,52 Н / мм 2 (Ортокрил зеленый - максимум) и от 129,69 ± 3,58 Н / мм . 2 (Форестакрил бесцветный - минимум) до 154,42 ± 3,84 Н / мм 2 (Ортокрил зеленый - максимум) после хранения в дистиллированной воде. В отношении сухого хранения были показаны следующие значительные изменения средних значений: Orthocryl colourless значительно снизил макротвердость после дезинфекции Stammopur DR (140.24 ± 5,13 Н / мм 2 , p≤0,001) и D050 Instru-Gen (143,13 ± 5,44 Н / мм 2 , p≤0,037) (рисунок 8). Дезинфекция Orthocryl green с помощью D050 Instru-Gen привела к значительному снижению макротвердости (150,63 ± 2,29 Н / мм 2 , p≤0,001). Это также верно для дезинфекции бесцветного Forestacryl с Impresept (126,92 ± 7,87 Н / мм 2 , p≤0,001) (Рисунок 8). Изменения значений макротвердости не показали значимых результатов после хранения в дистиллированной воде.


3.4. Микротвердость

Результаты представлены как средние значения ± стандартное отклонение (Рисунок 9). Значения микротвердости образцов для испытаний в сухом состоянии варьировались от 116,39 ± 17,05 Н / мм 2 (Форестакрил бесцветный - минимум) до 139,14 ± 11,55 Н / мм 2 (Ортокрил бесцветный - максимум) и от 98,43 ± 25,03 Н / мм 2 (бесцветный форестакрил - минимум) до 134,78 ± 7,49 Н / мм 2 (бесцветный ортокрил - максимум) после хранения в дистиллированной воде.После хранения в дистиллированной воде значительного изменения микротвердости не наблюдалось. По сравнению со средними значениями сухого хранения были обнаружены следующие результаты: дезинфекция бесцветного Orthocryl с помощью D050 Instru-Gen привела к значительному изменению микротвердости (123,87 ± 17,28 Н / мм 2 , p≤0,001) (рис. 9). Микротвердость бесцветного Forestacryl увеличилась после дезинфекции Impresept (131,86 ± 8,52 Н / мм 2 , p≤0,039) и снизилась после дезинфекции Stammopur DR (97.83 ± 15,32 Н / мм 2 , p≤0,006) и Instru-Gen (92,14 ± 11,57 Н / мм 2 , p≤0,001) (рисунок 9).


3.5. Средняя шероховатость

Результаты представлены как средние значения ± стандартное отклонение (Рисунок 10). Средние значения шероховатости образцов для испытаний в сухом хранении варьировались от 0,22 ± 0,19 мкм м (Ортокрил бесцветный - минимум) до 0,89 ± 0,43 мкм мкм (Форестакрил бесцветный - максимум) и от 0,17 ± 0,05 мкм мкм (Ортокрил бесцветный - минимум) до 0.93 ± 0,63 мкм мкм (Forestacryl pink - максимум) после хранения в дистиллированной воде. По сравнению со значениями, полученными в контрольной группе с дистиллированной водой, Forestacryl colorless показал значительное увеличение средней шероховатости после дезинфекции Stammopur (1,80 ± 0,95 μ m, p <0,05). Средняя шероховатость зеленого ортокрила значительно выросла после дезинфекции с помощью Instru-Gen (2,87 ± 0,59 мкм м, p <0,05). Это также верно и для дезинфекции Forestacryl pink с помощью Instru-Gen (2.45 ± 2,09 мкм м, p <0,05). После дезинфекции бесцветного Ортокрила каким-либо из исследуемых дезинфицирующих средств значительного изменения средней шероховатости не наблюдалось.


3.6. Изменение цвета

Результаты представлены как средние значения ± стандартное отклонение (Рисунок 11). Погружение ортодонтических акриловых смол в дистиллированную воду вызывало изменение цвета испытуемых образцов. Значения ΔE варьировались от ΔE 0,62 ± 0,25 (Форестакрил розовый) в минимуме до ΔE 1.02 ± 0,43 (ортокрил зеленый) максимум после хранения в дистиллированной воде (рис. 11). Ортодонтические акрилы не изменили цвет после дезинфекции.


4. Обсуждение

В настоящем исследовании in vitro было определено влияние обычных стоматологических дезинфицирующих средств на модуль упругости, прочность на изгиб, макротвердость, микротвердость, среднюю шероховатость и стабильность цвета ортодонтических акриловых материалов. Использовались четыре ортодонтических акрила холодного отверждения [12].Испытуемые образцы были покрыты тремя дезинфицирующими средствами, содержащими разные основные активные ингредиенты (Impresept, Stammopur DR → альдегиды, D 050 InstruGen → окисляющие соединения). Дистиллированная вода использовалась в качестве контрольной серии испытаний для сравнения влияния погружения в воду по сравнению с возможным действием дезинфицирующих средств.

Одноразовая дезинфекция ортодонтических акриловых материалов не оказала значительного влияния на модуль упругости и прочность на изгиб (рисунки 6 и 7) [13]. Высокий уровень дисперсии значений стандартного отклонения в отношении эластичности, определенной по объему, указывает на относительно низкий статус гомогенизации исследуемых образцов (рис. 6) [13].Ортодонтический акрил Orthocryl (бесцветный и зеленый) продемонстрировал постоянно более высокие значения модуля упругости и прочности на изгиб по сравнению с результатами Forestacryl (бесцветный и зеленый) (Рисунки 6 и 7). Кроме того, не было обнаружено снижение прочности на изгиб после подачи дезинфицирующих средств и дистиллированной воды. Следовательно, невозможно описать пластифицирующий эффект. Подтверждение пластифицирующего эффекта возможно после более длительного хранения в дезинфицирующих средствах [14].

Что касается результатов измерений прочности на изгиб, результаты этого исследования вряд ли можно сопоставить с другими выводами в литературе. Поэтому предел текучести был установлен индивидуально на уровне 1%.

В отличие от результатов модуля упругости и прочности на изгиб, связанный с материалом анализ макротвердости, микротвердости и средней шероховатости исследуемых ортодонтических акриловых материалов после однократной дезинфекции привел к частичным значительным структурным изменениям (Рисунки 8, 9 и 10) [15].

Тем не менее, необходимо учитывать, являются ли измеренные воздействия на испытуемые образцы результатом процесса дезинфекции или же свойства материала ортодонтического акрила холодного отверждения ответственны за эти результаты [16]. Таким образом, ортодонтические акрилы холодного отверждения были разбросаны и показали более высокую неоднородность по сравнению со смолами для протезов на основе ПММА [17]. Однако другой причиной может быть ручная обработка и полировка использованных образцов для испытаний [18].

Все исследованные дезинфицирующие средства показали значительные изменения макротвердости следующих ортодонтических акриловых материалов: бесцветный ортокрил, зеленый и бесцветный форестакрил по сравнению с контрольной группой сухого хранения (рис. 8) [19]. В целом очевидно, что акриловые краски Orthocryl прочнее, чем акрилы Forestacryl (рис. 8). Ортокрил зеленый показал более высокие результаты макротвердости по сравнению с бесцветным Ортокрилом (Рисунок 8). Это открытие может быть заявлено из-за того, что в ортодонтические акрилы добавлены цветные пигменты.Согласно рекомендациям производителя, другие ингредиенты ортодонтического акрила были аналогичными. Кроме того, тот же полимерный порошок использовался для процесса рассеивания. В настоящем исследовании было показано, что исследуемые дезинфицирующие средства повлияли на ортодонтические акрилы после одноразовой дезинфекции. Измеренные изменения макротвердости могут клинически привести к снижению общей прочности используемых ортодонтических акриловых материалов, что может привести к повышенному риску разрушения ортодонтических акриловых материалов [20].

Используемые дезинфицирующие средства привели к значительным изменениям микротвердости ортодонтических акриловых красок Orthocrylless и Forestacrylless по сравнению со значениями контрольной группы сухого хранения (Рисунок 9).

Следует критически учитывать высокое стандартное отклонение результатов микротвердости. Показано, что единичные значения подвергались сильным колебаниям (рисунок 9). Это может вызвать неоднородность ортодонтических акриловых материалов из-за описанного производственного процесса.В этом исследовании in vitro тестируемые образцы были изготовлены в клинических условиях с использованием техники нанесения ортодонтического акрила. Следовательно, процесс изготовления насадочной техники должен выполняться точно. Поочередно полимер и мономер наносили непрерывным слоем. Не следует использовать слишком много мономера или полимера, а жидкость должна полностью абсорбироваться порошком [21]. Наконец, даже при точном выполнении выполненного метода обработки невозможно предотвратить индивидуальные вариации ортодонтических акриловых материалов.Таким образом, рассыпанные ортодонтические акрилы имеют больше структурных неравенств, чем ортодонтические или стоматологические базовые полимеры, которые были произведены с использованием других технологий обработки [22]. Съемные ортодонтические аппараты в основном используются пациентами детей и подростков; это может привести к повышенному риску повреждения из-за неправильного обращения. Следовательно, ортодонтические акрилы должны иметь достаточную общую прочность.

В совокупности увеличение макро- и микротвердости вызывает охрупчивание ортодонтических акриловых материалов.Это приводит к повышенной подверженности переломам. Однако снижение макро- и микротвердости означает размягчение ортодонтических акриловых материалов, что может вызвать изменение формы [19]. В повседневной клинической практике многократная дезинфекция ортодонтических акриловых материалов может иметь серьезные недостатки.

В начале измерений средней шероховатости Форестакрил имел более высокое значение (0,89 ± 0,43 мкм м Форестакрил бесцветный, хранение в сухом состоянии; 0,93 ± 0,63 мкм мкм Форестакрил розовый, хранение в дистиллированной воде).В отличие от Форестакрила, Ортокрил показал пониженную среднюю шероховатость перед дезинфекцией (0,22 ± 0,19 мкм мкм Бесцветный Ортокрил, хранение в сухом состоянии; 0,17 ± 0,05 мкм мкм Бесцветный Ортокрил, хранение в дистиллированной воде) (Рисунок 10). Дезинфекция Stammopur привела к значительному увеличению средней шероховатости бесцветного Forestacryl (1,80 ± 0,95 мкм м, p = 0,043) (рис. 10). Дезинфекция Impresept и D050 Intru-Gen не оказала значительного влияния на среднюю шероховатость любого исследованного ортодонтического акрила (рис. 10) [23].Однако следует учитывать значительно выявленные изменения средней шероховатости, возможно, вызванные ручной обработкой и ручной полировкой испытательных образцов. Съемные ортодонтические аппараты носят днем ​​и ночью. В период отдыха съемные ортодонтические аппараты размещаются в специальных ящиках для хранения. За это время зубной налет может высохнуть в структуре поверхности ортодонтических приспособлений. Поэтому зубной налет удалить сложнее.Однако средняя шероховатость не должна ухудшиться после необходимого процесса дезинфекции.

Анализ данных измерения цвета показывает, что дезинфекция четырех исследованных ортодонтических акриловых материалов не привела к значительным изменениям цвета (рис. 11). Было обнаружено незначительное влияние на стабильность цвета Orthocryl green, что не было статистически значимым после дезинфекции Impresept и D050 Instru-Gen (рис. 11). Изменение цвета ортодонтического акрила можно субъективно заметить человеческим глазом, начиная со значения ΔE ≥2.Клиническая значимость этих результатов может быть незначительной из-за того, что визуально воспринимаются только значения ΔE выше 2. ΔE-значения настоящего исследования in vitro обычно не воспринимаются визуально [24, 25].

Таким образом, дезинфекция некоторых ортодонтических акриловых материалов вызвала значительные изменения измеряемых параметров. Изменения коснулись применяемого дезинфицирующего средства и протестированного ортодонтического акрила [11, 13]. Обработка ортодонтических акриловых материалов может привести к многочисленным дефектам, которые могут привести к пористости, отклонениям формы и разрушению поверхностных структур.Дефекты, образующие пустоты, ухудшают структуру и ухудшают физическое и биологическое качество ортодонтических акриловых материалов. Кроме того, эти дефекты отрицательно сказываются на гигиенических характеристиках и ухудшают эстетику ортодонтических аппаратов [16, 25]. Поэтому для уменьшения описанных дефектов в процессе полимеризации обычно используется высокое давление [16, 25, 26].

В принципе сложно оценить, как часто протез дезинфицируется в течение его клинической службы.Перед родами зубные протезы необходимо продезинфицировать впервые [6]. В отличие от зубных протезов, съемные ортодонтические аппараты со сроком ношения не менее одного года и интервалом между осмотрами в шесть недель необходимо дезинфицировать 20 и более раз [27].

Таким образом, в данном исследовании было проверено влияние одноразовой дезинфекции. В общем, дезинфицирующие средства должны иметь широкий диапазон применения. Дезинфицирующее средство Impresept рекомендовано производителем для дезинфекции материалов для снятия слепков и сертифицировано как средство для дезинфекции поверхностей [28].Универсальное применение дезинфицирующих средств как для оттисков зубов, так и для ортодонтических акриловых материалов позволяет сэкономить время и снизить затраты. Ортодонтический акрил - один из наиболее часто используемых материалов в ортодонтической практике. Таким образом, важно понимать совместимость используемых материалов и устанавливать безопасные, а также стандартизированные меры гигиены в ортодонтической практике [1, 6].

5. Выводы

Целью всех процедур инфекционного контроля является предотвращение передачи инфекций между пролеченными пациентами, ортодонтическим персоналом и техниками-ортодонтами.Съемные ортодонтические аппараты во время клинического лечения подвергаются огромным нагрузкам. Даже во время интеграции и исключения аппаратов дополнительное напряжение ортодонтических акриловых материалов будет продолжаться. Поэтому важно, чтобы ортодонтический акрил сохранял модуль упругости и прочность на изгиб после многократных процессов дезинфекции. В некоторых ортодонтических акрилах дезинфекция вызывала значительные изменения измеряемых параметров. Изменения касались применяемого дезинфицирующего средства и исследуемого акрила.Таким образом, от производителей ортодонтических смол было бы желательно рекомендовать соответствующие дезинфицирующие средства.

Ограничением настоящего исследования in vitro является исследование одноразовой дезинфекции ортодонтических акриловых материалов. Здесь описаны недавно изготовленные съемные ортодонтические аппараты. Для моделирования повседневной клинической практики в дальнейших исследованиях следует изучить влияние повторного нанесения дезинфицирующих средств на ортодонтические акрилы. Дополнительным моделированием клинической ситуации в течение среднего периода ношения съемных ортодонтических акриловых материалов могло бы стать исследование механических свойств после дезинфекции восстановленных ортодонтических акриловых материалов.

Доступность данных

Данные, использованные для подтверждения результатов этого исследования, могут быть предоставлены после подачи заявки в Отделение протезирования Университета Мартина Лютера в Галле-Виттенберге, с которым можно связаться у доктора Арне Беклера, Отделение протезирования, Университетская клиника Галле, Magdeburger Straße 12, 06112 Галле, Германия.

Раскрытие информации

Настоящее исследование было проведено при участии авторов кафедры протезирования, Университет Мартина Лютера в Галле-Виттенберге, Галле (Заале), Германия.

Конфликт интересов

Авторы заявляют об отсутствии конфликта интересов.

Благодарности

Авторы благодарят доктора Сета Бозарта, DMD, Университет Тафтса, Бостон, и доктора Джейми Н. Амира, DDS, Окала, Флорида, США, за их техническую поддержку и комментарии относительно рукописи.

.

методов дезинфекции | Рекомендации по дезинфекции и стерилизации | Библиотека руководств | Инфекционный контроль

Многие дезинфицирующие средства используются по отдельности или в комбинации (например, перекись водорода и надуксусная кислота) в медицинских учреждениях. К ним относятся спирты, хлор и соединения хлора, формальдегид, глутаральдегид, орто -фталевый альдегид, пероксид водорода, йодофоры, надуксусная кислота, фенольные соединения и соединения четвертичного аммония. Коммерческие составы на основе этих химикатов считаются уникальными продуктами и должны быть зарегистрированы в EPA или одобрены FDA.В большинстве случаев конкретный продукт предназначен для определенной цели и должен использоваться определенным образом. Поэтому пользователи должны внимательно читать этикетки, чтобы убедиться, что правильный продукт выбран для предполагаемого использования и применяется эффективно.

Дезинфицирующие средства не взаимозаменяемы, и неправильная концентрация и неподходящие дезинфицирующие средства могут привести к чрезмерным расходам. Поскольку профессиональные заболевания уборщиков связаны с использованием нескольких дезинфицирующих средств (например,g., формальдегид, глутаральдегид и хлор), следует соблюдать меры предосторожности (например, перчатки и надлежащая вентиляция), чтобы минимизировать воздействие 318, 480, 481 . Астма и реактивное заболевание дыхательных путей могут возникать у сенсибилизированных лиц, подвергающихся воздействию любого химического вещества, переносимого по воздуху, включая бактерициды. Клинически значимая астма может возникать на уровнях ниже предельных уровней, регулируемых OSHA или рекомендованных NIOSH. Предпочтительным методом контроля является устранение химического вещества (посредством инженерного контроля или замены) или перемещение рабочего.

Следующий обзор характеристик производительности каждого из них предоставляет пользователям достаточную информацию, чтобы выбрать подходящее дезинфицирующее средство для любого элемента и использовать его наиболее эффективным способом.

.

Как сделать лучший выбор для объектов

Дезинфекция и дезинфекция, Образовательная

Вернуться к новостям

Зачем лечить?

Почти каждая среда на планете содержит бактерии и микроорганизмы. Вы можете быть удивлены, узнав, что на одном квадратном сантиметре кожи человека содержится более 600 000 бактерий 1 . Большинство бактерий безвредны для человека. Но болезнетворные организмы, называемые патогенами, могут быть опасными или даже смертельными.Одним из самых заразных и известных заболеваний 2020 года стал COVID-19, вызванный вирусом SARS-CoV-2.

Регулярное использование правильных типов дезинфицирующих средств на поверхностях в вашем учреждении имеет решающее значение для предотвращения распространения таких болезней, как простуда, грипп и даже COVID-19. Поскольку на рынке представлено множество типов дезинфицирующих средств, важно понимать, как они работают, включая их плюсы и минусы, чтобы принять обоснованное решение о том, как лучше всего дезинфицировать и защитить людей на вашем предприятии.

Как действуют дезинфицирующие средства?

Дезинфицирующие средства - это химические вещества, применяемые к неживым объектам с целью уничтожения бактерий, вирусов, грибков, плесени или грибка, обитающих на объектах. По определению, дезинфицирующие формулы должны быть зарегистрированы в Агентстве по охране окружающей среды (EPA). «Активный ингредиент» в каждой формуле дезинфицирующего средства - это то, что убивает патогены, обычно разрушая или повреждая их клетки. Активным ингредиентам обычно помогают другие ингредиенты с различными целями.Например, поверхностно-активные вещества могут быть добавлены в формулу дезинфицирующего средства, чтобы обеспечить постоянное смачивание поверхности или помочь при очистке.

Основные виды дезинфицирующих средств, категорично говоря

Несколько широких категорий дезинфицирующих средств используются при обслуживании коммерческих и промышленных объектов. Ниже приведены несколько наиболее распространенных типов. Хотя это не исчерпывающий список, они охватывают подавляющее большинство используемых сегодня. Если вам нужна более подробная информация о плюсах и минусах этих типов дезинфицирующих средств, обратитесь к таблице «Жидкие дезинфицирующие средства 101» компании Nyco.

Особо следует отметить: когда такой патоген, как SARS-CoV-2, вызывающий COVID-19, первоначально идентифицируется экспертами, он классифицируется как «новый патоген». EPA позволяет определять только некоторые дезинфицирующие средства как эффективные против появляющихся патогенов. У Nyco есть несколько дезинфицирующих средств с этим особым заявлением. Внимательно прочтите этикетку дезинфицирующего средства, чтобы убедиться, что на нем заявлен новый патоген (в настоящее время актуально для вируса SARS-CoV-2).

Четвертичные соединения аммония (Quats) Лучший выбор для дезинфекции в больницах и учреждениях благодаря их низкой стоимости и быстрому действию против широкого спектра микроорганизмов.В состав Quats входят различные моющие средства, обеспечивающие как очищающие, так и дезинфицирующие свойства. Дезинфицирующее средство Sani-Spritz Spray RTU от Nyco является примером дезинфицирующего средства на основе четвертичного раствора, обладающего как очищающей способностью, так и широким спектром требований к уничтожению многих распространенных и опасных бактерий и вирусов (включая новые патогены и SARS-CoV-2).
Соединения хлора Убивает множество организмов, включая устойчивые вирусы. Настоятельно рекомендуется для очистки жидкостей организма.Дезинфицирующие средства на основе хлора недороги и имеют относительно быстрое время уничтожения, однако они могут вызывать коррозию и вызывать обесцвечивание, а также раздражение, если не используются по назначению. Chlorine Sanitizer II - это пример дезинфицирующего средства с хлором, идеально подходящего для использования в медицинских учреждениях и при приготовлении пищи.
Спирты При разбавлении в воде спирты эффективны против широкого спектра бактерий, хотя для дезинфекции влажных поверхностей часто требуются более высокие концентрации.Недостатком является то, что они быстро испаряются (и, следовательно, не могут оставаться на поверхности достаточно долго, чтобы убить), они легковоспламеняемы и могут не иметь требований к устойчивости к органической почве, что означает, что они могут быть неэффективными, когда органические вещества (например, кровь ) настоящее.
Альдегиды Очень эффективен против бактерий, вызывающих туберкулез, но для их дезинфекции необходимо высокое соотношение миллионных долей (ppm). У некоторых бактерий выработалась устойчивость к альдегидам, и было обнаружено, что они вызывают астму и другие проблемы со здоровьем.Они также могут оставлять жирные следы и должны находиться в щелочном растворе.
Йодофоры Могут использоваться для дезинфекции некоторого медицинского оборудования, не являющегося критическим, но могут окрашивать поверхности и иметь неприятный запах (например, йод). Идофоры уже не часто используются в обслуживании объектов.
Фенольные соединения Эффективен против патогенных бактерий, включая Mycobacterium tuberculosis, а также грибков и вирусов, но также очень токсичен и вызывает коррозию, поражая поверхности, одновременно поражая находящиеся на них организмы.В некоторых областях действуют ограничения на утилизацию фенолов.
Перекись водорода Продукты на основе перекиси водорода, созданные в виде готовых к использованию дезинфицирующих средств, считаются «более экологичными» и экологически безопасными. Это потому, что они распадаются на естественные элементы водорода и кислорода. Они обладают умеренной кислотностью и являются эффективными чистящими средствами. При высоких концентрациях (перекиси водорода) они могут стать нестабильными и опасными.

Что следует учитывать при выборе дезинфицирующего средства 2

Есть четыре основных момента, которые следует учитывать при выборе дезинфицирующего средства, которое наилучшим образом соответствует потребностям вашего учреждения. Ответы на эти вопросы дадут вам основу для определения наилучшего продукта (ов) для использования в вашей организации.

1. Эффективность

Убивает ли дезинфицирующее средство микробы и патогены, вызывающие наибольшую озабоченность в вашем учреждении? Например, вас может сильно беспокоить Staphylococcus aureus, устойчивый к метициллину (MRSA).Некоторые дезинфицирующие средства одобрены EPA как эффективные против этих бактерий . Nyco® Uno - одно из таких дезинфицирующих средств. Имейте в виду, что патогены могут иметь несколько штаммов, а дезинфицирующие средства сертифицированы для определенных штаммов. Uno также эффективен против Staphylococcus aureus (CA-MRSA), устойчивого к метициллину, вызываемого сообществом. В зависимости от вашей отрасли и типа учреждения - здравоохранения, образования, долгосрочного ухода, гостеприимства - у вас будут разные потребности и требования.

2.Время убийства

Как быстро дезинфицирующее средство убивает конкретный патоген? Сохраняет ли продукт визуально влажные поверхности, чтобы выдержать это время уничтожения? Опять же, формулы дезинфицирующих средств зарегистрированы для уничтожения определенных патогенов в течение определенного периода времени, и они должны быть влажными на поверхности все время, чтобы активно работать. Типичное время убийства - от 30 секунд до 5 минут. Если дезинфицирующему средству требуется 10 минут, убедитесь, что оно действительно так долго будет оставаться влажным.Дезинфицирующие средства на спиртовой основе могут очень хорошо испаряться до требуемого времени контакта. Прочтите и соблюдайте все инструкции по использованию и, при необходимости, увлажнению.

3. Безопасность

Безопасен ли продукт для людей и безопасен для поверхностей, на которые он наносится? Как вы узнали ранее в этой статье, некоторые категории дезинфицирующих средств токсичны, некоторые окрашивают, другие вызывают коррозию, а третьи имеют нежелательный запах. Проверьте показатели токсичности и воспламеняемости продуктов, а также любые рекомендации по средствам индивидуальной защиты (СИЗ) для применяемых вами дезинфицирующих средств.Убедитесь, что дезинфицирующее средство не повредит какую-либо поверхность, для которой оно предназначено.

4. Простота использования

Практичны ли шаги, необходимые для использования данного дезинфицирующего средства, в вашем учреждении? Некоторые приложения требуют выполнения нескольких шагов, что не всегда выполнимо. Жесткость воды - один из факторов, который может повлиять на эффективность некоторых формул дезинфицирующих средств. Sani-Spritz Spray очищает и дезинфицирует всего за один шаг, что делает его лучшим выбором в качестве простого, готового к использованию дезинфицирующего средства, которое устраняет широкий спектр бактерий, вирусов, грибков и плесени в больницах, учреждениях и на производстве.

Сортировка информации о различных типах дезинфицирующих средств требует времени, но это важный шаг для обеспечения того, чтобы вы принимали наилучшее решение по техническому обслуживанию для своего учреждения. Наличие под рукой подходящих продуктов и надежного плана по предотвращению заболеваний и инфекций позволит сэкономить усилия и расходы в будущем, а также даст дополнительное душевное спокойствие вам, вашим сотрудникам и любым посетителям, которые проходят через ваши двери.

1 Разъяснение науки. «Мы окружены». Наука разъяснена.com. http://www.scienceclarified.com/scitech/Bacteria-and-Viruses/We-Are-Surounded.html (по состоянию на 21 февраля 2016 г.)

2 Рутала, Уильям А. «Выбор идеального дезинфицирующего средства». Disinfectionandsterilization.org. http://disinfectionandsterilization.org/selection-of-the-ideal-disinfectant/ 21 февраля 2014 г. (по состоянию на 21 февраля 2016 г.).

Теги: дезинфицирующее средство, дезинфицирующее средство

.

ссылок | Рекомендации по дезинфекции и стерилизации | Библиотека руководств | Инфекционный контроль

Руководство по дезинфекции и стерилизации в медицинских учреждениях (2008)

  1. Гарнер Дж.С., Фаверо МС. Руководство CDC по мытью рук и контролю за окружающей средой в больницах, 1985. Infect. Контроль 1986; 7: 231-43.
  2. Центры по контролю заболеваний. Амбулаторные и стационарные процедуры в США, 1996 г. Атланта, Джорджия, 1998: 1-39.
  3. Uttley AH, Симпсон RA. Аудит дезинфекции бронхоскопа: обзор процедур в Англии и Уэльсе и случаев заражения микобактериями. J. Hosp. Заразить. 1994; 26: 301-8.
  4. Заиди М., Ангуло М., Сифуэнтес-Осорнио Дж. Практика дезинфекции и стерилизации в Мексике. J. Hosp. Заразить. 1995; 31: 25-32.
  5. Маккарти GM, Коваль Дж. Дж., Джон М. А., Макдональд Дж. К. Практика инфекционного контроля в Канаде: следуют ли стоматологи рекомендациям? J. Can. Вмятина. Доц. 1999; 65: 506-11.
  6. Spach DH, Silverstein FE, Stamm WE. Передача инфекции при эндоскопии желудочно-кишечного тракта и бронхоскопии. Энн. Междунар. Med. 1993; 118: 117-28.
  7. Вебер DJ, Рутала, Вашингтон. Уроки вспышек заболеваний, связанных с бронхоскопией. Заразить. Control Hosp. Эпидемиол. 2001; 22: 403-8.
  8. Вебер Д.Дж., Рутала В.А., ДиМарино А.Дж., мл. Профилактика инфекций после эндоскопии желудочно-кишечного тракта: важность профилактики и обработки. В: ДиМарино А.Дж., младший, Бенджамин С.Б., ред. Заболевания желудочно-кишечного тракта: эндоскопический доступ.Торофар, Нью-Джерси: Slack Inc., 2002: 87-106.
  9. Мейерс Х., Браун-Эллиотт Б.А., Мур Д. и др. Вспышка инфекции Mycobacterium chelonae после липосакции. Clin. Заразить. Dis. 2002; 34: 1500-7.
  10. Lowry PW, Jarvis WR, Oberle AD и др. Mycobacterium chelonae, вызывающая средний отит у пациентов с заболеваниями уха, носа и горла. N. Engl. J. Med. 1988; 319: 978-82.
  11. Центры по контролю и профилактике заболеваний. Инфекции Pseudomonas aeruginosa, связанные с трансректальной биопсией простаты под контролем УЗИ - Джорджия, 2005.MMWR CDC Surveill. Сумм. 2006; 55: 776-7.
  12. Mehta AC, Prakash UBS, Garland R и др. Профилактика инфекции, связанной с гибкой бронхоскопией. Сундук 2006; 128: 1742-55.
  13. Favero MS, Bond WW. Химическая дезинфекция медицинских и хирургических материалов. В кн .: Блок СС, изд. Дезинфекция, стерилизация и консервация. Филадельфия: Липпинкотт Уильямс и Уилкинс, 2001: 881-917.
  14. Сполдинг EH. Химическая дезинфекция медицинских и хирургических материалов. В: Лоуренс С., Блок СС, ред.Дезинфекция, стерилизация и консервация. Филадельфия: Леа и Фебигер, 1968: 517-31.
  15. Simmons BP. Рекомендации CDC по профилактике и борьбе с нозокомиальными инфекциями. Руководство по больничному экологическому контролю. Am. J. Infect. Контроль 1983; 11: 97-120.
  16. Блок СС. Дезинфекция, стерилизация и консервация. Филадельфия: Липпинкотт Уильямс и Уилкинс, 2001.
  17. Rutala WA, 1994, 1995 и 1996 Комитет руководящих принципов APIC. Руководство APIC по выбору и использованию дезинфицирующих средств.Ассоциация профессионалов в области инфекционного контроля и эпидемиологии, Inc. Am. J. Infect. Контроль 1996; 24: 313-42.
  18. Rutala WA. Дезинфекция, стерилизация и утилизация отходов. В: Венцель Р.П., изд. Профилактика и борьба с внутрибольничными инфекциями. Балтимор: Уильямс и Уилкинс, 1997: 539-93.
  19. Rutala WA. Руководство APIC по выбору и использованию дезинфицирующих средств. Am. J. Infect. Контроль 1990; 18: 99-117.
  20. Ассоциация медсестер. Рекомендуемые методы дезинфекции высокого уровня.АОРН Дж. 2005; 81: 402-12.
  21. Гарнер Дж.С., Фаверо МС. Рекомендации CDC по профилактике и борьбе с нозокомиальными инфекциями. Руководство по мытью рук и контролю за окружающей средой в больницах, 1985 г. Заменяет руководство по контролю за окружающей средой в больницах, опубликованное в 1981 году. Am. J. Infect. Control 1986; 14: 110-29.
  22. Центры по контролю заболеваний. Руководство по предотвращению передачи вируса иммунодефицита человека и вируса гепатита B работникам здравоохранения и общественной безопасности. MMWR 1989; 38: 1-37.
  23. Центры по контролю заболеваний. Руководство по контролю за инфекциями окружающей среды в медицинских учреждениях, 2003 г. MMWR 2003; 52 (№ RR-10): 1-44.
  24. Bhattachatyya M, Kepnes LJ. Эффективность иммерсионной дезинфекции для гибких волоконно-оптических ларингоскопов. Отоларингол Голова Шея 2004; 130: 681-5.
  25. Hamasuna R, Nose K, Sueyoshi T., Nagano M, Hasui Y, Osada Y. Дезинфекция цистоскопического оборудования на высоком уровне раствором орто-фталевого альдегида. J. Hosp. Заразить. 2004; 57: 346-8.
  26. Foliente RL KB, Aprecio RM, Bains HJ, Kettering JD, Chen YK. Эффективность дезинфицирующих средств высокого уровня для обработки желудочно-кишечных эндоскопов в тестах с моделированием использования. Гастроинтест. Endosc. 2001; 53: 456-62.
  27. Ковач Б.Дж., Чен Ю.К., Кеттеринг Д.Д., Апресио Р.М., Рой И. Дезинфекция желудочно-кишечных эндоскопов на высоком уровне: адекватны ли действующие рекомендации? Am. J. Gastroenterol. 1999; 94: 1546-50.
  28. Rutala WA, Clontz EP, Weber DJ, Hoffmann KK. Методы дезинфекции эндоскопов и других полукритических предметов.Заразить. Control Hosp. Эпидемиол. 1991; 12: 282-8.
  29. Филлипс Дж., Хулка Б., Халка Дж., Кейт Д., Кейт Л. Лапароскопические процедуры: Опрос членства Американской ассоциации гинекологических лапароскопистов за 1975 год. Дж. Репрод. Med. 1977; 18: 227-32.
  30. Muscarella LF. Современные методы обработки инструментов: результаты национального исследования. Уход за желудочно-кишечным трактом 2001; 24: 253-60.
  31. Райт EP, Collins CH, Yates MD. Mycobacterium xenopi и Mycobacterium kansasii в системе водоснабжения больницы.J. Hosp. Заразить. 1985; 6: 175-8.
  32. Уоллес Р.Дж., младший, Браун Б.А., Дриффит, Делавэр. Нозокомиальные вспышки / псевдо-вспышки, вызванные нетуберкулезными микобактериями. Анну. Rev. Microbiol. 1998; 52: 453-90.
  33. Mitchell DH, Hicks LJ, Chiew R, Montanaro JC, Chen SC. Псевдоэпидемия Legionella pneumophila серогруппы 6, связанная с зараженными бронхоскопами. J. Hosp. Заразить. 1997; 37: 19-23.
  34. Meenhorst PL, Reingold AL, Groothuis DG, et al. Нозокомиальная пневмония, связанная с водой, вызванная Legionella pneumophila серогрупп 1 и 10.J. Infect. Dis. 1985; 152: 356-64.
  35. Атлас РМ. Легионелла: от среды обитания до патологии болезней, обнаружения и борьбы. Environ. Microbiol. 1999; 1: 283-93.
  36. Rutala WA, Weber DJ. Вода как резервуар для внутрибольничных возбудителей болезней. Заразить. Control Hosp. Эпидемиол. 1997; 18: 609-16.
  37. Вебер DJ, Рутала, Вашингтон. Экологические проблемы и внутрибольничные инфекции. В: Венцель Р.П., изд. Профилактика и борьба с внутрибольничными инфекциями. Балтимор: Уильямс и Уилкинс, 1997: 491-514.
  38. Общество медсестер и ассистентов гастроэнтерологов. Стандарты инфекционного контроля и обработки гибких желудочно-кишечных эндоскопов. Гастроэнтерол. Nurs. 2000; 23: 172-9.
  39. Гердинг Д. Н., Петерсон Л. Р., Веннес Я. Очистка и дезинфекция оптоволоконных эндоскопов: оценка времени воздействия глутаральдегида и сушка на воздухе. Гастроэнтерология 1982; 83: 613-8.
  40. Общество медсестер и ассистентов гастроэнтерологов. Руководство по использованию дезинфицирующих и стерилизующих средств высокого уровня при переработке гибких желудочно-кишечных эндоскопов.
  41. Тернер А.Г., Хиггинс М.М., Крэддок Дж. Дезинфекция иммерсионных баков (Хаббард) в ожоговом отделении больницы. Arch. Environ. Здоровье 1974; 28: 101-4.
  42. Rutala DR, Rutala WA, Weber DJ, Thomann CA. Риски заражения, связанные со спирометрией. Заразить. Control Hosp. Эпидемиол. 1991; 12: 89-92.
  43. Кон В.Г., Коллинз А.С., Кливленд Дж. Л., Харт Дж. А., Эклунд К. Дж., Мальвиц Д. М.. Руководство по инфекционному контролю в стоматологических учреждениях-2003. MMWR 2003; 52 (№ RR-17): 1-67.
  44. Sehulster L, Chinn RYW, Консультативный комитет по практике инфекционного контроля в здравоохранении.Руководство по контролю инфекций окружающей среды в медицинских учреждениях. MMWR 2003; 52: 1-44.
  45. Rutala WA, White MS, Gergen MF, Weber DJ. Бактериальное заражение клавиатуры: эффективность и функциональное воздействие дезинфицирующих средств. Инфекционный контроль Hosp Epidemiol 2006; 27: 372-7.
  46. Sattar SA, Lloyd-Evans N, Springthorpe VS, Nair RC. Институциональные вспышки ротавирусной диареи: потенциальная роль фомитов и поверхностей окружающей среды как транспортных средств для передачи вируса. J. Hyg. (Лондон). 1986; 96: 277-89.
  47. Вебер DJ, Рутала, Вашингтон. Роль загрязнения окружающей среды в передаче устойчивых к ванкомицину энтерококков. Заразить. Control Hosp. Эпидемиол. 1997; 18: 306-9.
  48. Уорд Р.Л., Бернштейн Д.И., Ноултон Д.Р. и др. Профилактика передачи ротавирусов от поверхности человеку путем обработки дезинфицирующим спреем. J. Clin. Microbiol. 1991; 29: 1991-6.
  49. Тайлер Р., Эйлифф Г.А., Брэдли С. Вирулицидная активность дезинфицирующих средств: исследования с полиовирусом. J. Hosp. Заразить. 1990; 15: 339-45.
  50. Гвалтни Дж. Младший, Хендли Дж. Передача экспериментальной риновирусной инфекции через зараженные поверхности. Am. J. Epidemiol. 1982; 116: 828-33.
  51. Sattar SA, Jacobsen H, Springthorpe VS, Cusack TM, Rubino JR. Химическая дезинфекция для прерывания передачи риновируса типа 14 с поверхностей окружающей среды на руки. Appl. Environ. Microbiol. 1993; 59: 1579-85.
  52. Sattar SA, Jacobsen H, Rahman H, Cusack TM, Rubino JR. Прекращение распространения ротавируса путем химической дезинфекции.Заразить. Control Hosp. Эпидемиол. 1994; 15: 751-6.
  53. Rutala WA, Barbee SL, Aguiar NC, Sobsey MD, Weber DJ. Антимикробная активность домашних дезинфицирующих средств и натуральных продуктов в отношении потенциальных патогенов человека. Заразить. Control Hosp. Эпидемиол. 2000; 21: 33-8.
  54. Сильверман Дж., Васкес Дж. А., Собел Дж. Д., Зервос М. Дж. Сравнительная активность антисептиков и дезинфицирующих средств in vitro по сравнению с клиническими изолятами видов Candida. Заразить. Control Hosp. Эпидемиол. 1999; 20: 676-84.
  55. Best M, Sattar SA, Springthorpe VS, Kennedy ME.Эффективность выбранных дезинфицирующих средств против Mycobacterium tuberculosis. J. Clin. Microbiol. 1990; 28: 2234-9.
  56. Best M, Kennedy ME, Coates F. Эффективность различных дезинфицирующих средств против Listeria spp. Appl. Environ. Microbiol. 1990; 56: 377-80.
  57. Бест М, Спрингторп В.С., Саттар С.А. Возможность проведения испытания комбинированного носителя для дезинфицирующих средств: исследования на смеси пяти типов микроорганизмов. Am. J. Infect. Контроль 1994; 22: 152-62.
  58. Мбитхи Дж. Н., Спрингторп В.С., Саттар С.А.Химическая дезинфекция вирусом гепатита А на поверхностях окружающей среды. Appl. Environ. Microbiol. 1990; 56: 3601-4.
  59. Спрингторп В.С., Гренье JL, Ллойд-Эванс Н., Саттар С.А. Химическая дезинфекция ротавирусов человека: эффективность коммерчески доступных продуктов в суспензионных тестах. J. Hyg. (Лондон). 1986; 97: 139-61.
  60. Акамацу Т., Табата К., Хиронга М., Каваками Х., Уеда М. Передача инфекции Helicobacter pylori через гибкую волоконно-оптическую эндоскопию. Am. J. Infect. Контроль 1996; 24: 396-401.
  61. Sattar SA, Спрингторп VS. Выживание и дезинфекция вируса иммунодефицита человека: критический обзор. Rev. Infect. Dis. 1991; 13: 430-47.
  62. Resnick L, Veren K, Salahuddin SZ, Tondreau S, Markham PD. Стабильность и инактивация HTLV-III / LAV в клинических и лабораторных условиях. JAMA 1986; 255: 1887-91.
  63. Weber DJ, Barbee SL, Sobsey MD, Rutala WA. Влияние крови на противовирусную активность гипохлорита натрия, фенольного соединения и четвертичного аммониевого соединения.Заразить. Control Hosp. Эпидемиол. 1999; 20: 821-7.
  64. Райс EW, Кларк RM, Johnson CH. Инактивация хлором Escherichia coli O157: H7. Emerg. Заразить. Dis. 1999; 5: 461-3.
  65. Pentella MA, Fisher T, Chandler S, Britt-Ohrmund T, Kwa BH, Yangco BG. Подготовлены ли дезинфицирующие средства для использования в больничных помещениях для ухода за пациентами? Заразить. Control Hosp. Эпидемиол. 2000; 21: 103.
  66. Bhalla A, Pultz NJ, Gries DM, et al. Приобретение внутрибольничных патогенов на руках после контакта с поверхностями окружающей среды рядом с госпитализированными пациентами.Инфекционный контроль Hosp Epidemiol 2004; 25: 164-7.
  67. Ray AJ, Hoyen CK, Taub TF, Eckstein EC, Donskey CJ. Нозокомиальная передача устойчивых к ванкомицину энтерококков с поверхностей. JAMA 2002; 287: 1400-1.
  68. Westwood JC, Mitchell MA, Legace S. Санитария в больницах: массовое бактериальное заражение мокрой швабры. Appl. Microbiol. 1971; 21: 693-7.
  69. Rutala WA, Weber DJ. Дезинфекция эндоскопов: обзор новых химических стерилизаторов, используемых для дезинфекции высокого уровня. Заразить.Control Hosp. Эпидемиол. 1999; 20: 69-76.
  70. Рассел нашей эры. Бактериальные споры и химические спорицидные агенты. Clin. Microbiol. Ред. 1990; 3: 99-119.
  71. Терлецкий Б, Акслер Д.А. Количественный анализ нейтрализации фунгицидной активности дезинфицирующих средств. Антимикробный. Агенты Chemother. 1987; 31: 794-8.
  72. Кляйн М., ДеФорест А. Инактивация вирусов гермицидами. Chem. Специалисты Мануф. Доц. Proc. 1963; 49: 116-8.
  73. Rutala WA, Cole EC, Wannamaker NS, Weber DJ. Инактивация Mycobacterium tuberculosis и Mycobacterium bovis 14 больничными дезинфицирующими средствами.Am. J. Med. 1991; 91: 267С-271С.
  74. Робисон Р.А., Бодили Х.Л., Робинсон Д.Ф., Кристенсен Р.П. Метод суспензии для определения срока повторного использования химических дезинфицирующих средств во время клинического использования. Appl. Environ. Microbiol. 1988; 54: 158-64.
  75. Isenberg HD, Giugliano ER, France K, Alperstein P. Оценка трех дезинфицирующих средств после стресса при использовании. J. Hosp. Заразить. 1988; 11: 278-85.
  76. Cole EC, Rutala WA, Nessen L, Wannamaker NS, Weber DJ. Влияние методики, разведения и времени воздействия на туберкулоцидную активность дезинфицирующих средств на основе глутаральдегида.Appl. Environ. Microbiol. 1990; 56: 1813-7.
  77. Power EG, Рассел А.Д. Спорицидное действие щелочного глутарового альдегида: факторы, влияющие на активность, и сравнение с другими альдегидами. J. Appl. Бактериол. 1990; 69: 261-8.
  78. Rutala WA, Gergen MF, Weber DJ. Спорицидная активность химических стерилизаторов, используемых в больницах. Заразить. Control Hosp. Эпидемиол. 1993; 14: 713-8.
  79. Rutala WA, Gergen MF, Weber DJ. Инактивация спор Clostridium difficile дезинфицирующими средствами. Заразить. Control Hosp.Эпидемиол. 1993; 14: 36-9.
  80. Асчензи JM, Ezzell RJ, Wendt TM. Более точный метод измерения туберкулоцидной активности дезинфицирующих средств. Appl. Environ. Microbiol. 1987; 53: 2189-92.
  81. Коллинз FM. Использование мембранных фильтров для измерения микобактерицидной активности щелочного раствора глутарового альдегида. Appl. Environ. Microbiol. 1987; 53: 737-9.
  82. Rubbo SD, Gardner JF, Webb RL. Биоцидная активность глутаральдегида и родственных соединений. J. Appl. Бактериол. 1967; 30: 78-87.
  83. Rutala WA, Weber DJ. Требования к маркировке FDA для дезинфекции эндоскопов: контрапункт. Заразить. Control Hosp. Эпидемиол. 1995; 16: 231-5.
  84. Коллинз FM. Кинетика туберкулоцидного ответа на щелочной глутаральдегид в растворе и на инертной поверхности. J. Appl. Бактериол. 1986; 61: 87-93.
  85. Управление по санитарному надзору за качеством пищевых продуктов и медикаментов. 2005. Стерилизаторы и дезинфицирующие средства высокого уровня, одобренные Управлением по контролю за продуктами и лекарствами (FDA) с общей заявкой на обработку многоразовых медицинских и стоматологических устройств, 13 мая 2005 г.[Эта ссылка больше не активна: www.fda.gov/cdrh/ode/germlab.html].
  86. Crow S, Metcalf RW, Beck WC, Birnbaum D. Дезинфекция или стерилизация? Четыре взгляда на артроскопы. АОРН Дж. 1983; 37: 854-9, 862-8.
  87. Loffer FD. Дезинфекция и стерилизация гинекологического лапароскопического оборудования. Опыт хирургического центра Феникс. J. Reprod. Med. 1980; 25: 263-6.
  88. Джонсон Л.Л., Шнейдер Д.А., Остин М.Д., Гудман Ф.Г., Баллок Дж.М., ДеБруин Дж. Два процента глютаральдегида: дезинфицирующее средство в артроскопии и артроскопической хирургии.J. Bone Joint Surg. 1982; 64: 237-9.
  89. Бернс С., Эдвардс М., Дженнингс Дж. И др. Влияние вариации инвазивных оптоволоконных осциллографов на результаты лечения пациентов. Заразить. Control Hosp. Эпидемиол. 1996; 17 (доп.): P42.
  90. Fuselier HA, Jr., Mason C. Жидкостная стерилизация в сравнении с дезинфекцией высокого уровня в урологическом кабинете. Урология 1997; 50: 337-40.
  91. Muscarella LF. Дезинфекция высокого уровня или «стерилизация» эндоскопов? Заразить. Control Hosp. Эпидемиол. 1996; 17: 183-7.
  92. миль RS. Какие стандарты мы должны использовать для дезинфекции крупного оборудования? J. Hosp. Заразить. 1991; 18: 264-73.
  93. Lee RM, Kozarek RA, Sumida SE, Raltz SL. Риск заражения стерильных щипцов для биопсии в продезинфицированных эндоскопах. Гастроинтест. Endosc. 1998; 47: 377-81.
  94. Kinney TP, Kozarek RA, Raltz S, Attia F. Загрязнение одноразовых щипцов для биопсии: проспективный анализ in vitro. Гастроинтест. Endosc. 2002; 56: 209-12.
  95. Центры по контролю заболеваний.Рекомендации по предотвращению возможной передачи человеческого Т-лимфотропного вируса типа III / вируса, ассоциированного с лимфаденопатией, через слезы. MMWR 1985; 34: 533-4.
  96. Lettau LA, Bond WW, McDougal JS. Гепатит и примерка диафрагмы. JAMA 1985; 254: 752.
  97. Schembre DB. Инфекционные осложнения, связанные с эндоскопией желудочно-кишечного тракта. Гастроинтест. Endosc. Clin. N. Am. 2000; 10: 215-32.
  98. Нельсон ДБ. Осложнения инфекционных заболеваний при эндоскопии ЖКТ: Часть II, экзогенные инфекции.Гастроинтест. Endosc. 2003; 57: 695-711.
  99. Чу Н.С., Фаверо М. Микробная флора желудочно-кишечного тракта и очистка гибких эндоскопов. Гастроинтест. Endosc. Clin. N. Am. 2000; 10: 233-44.
  100. Alfa MJ, Няня DL. Больничная оценка ортофталевого альдегида как дезинфицирующего средства высокого уровня для гибких эндоскопов. J. Hosp. Заразить. 1994; 26: 15-26.
  101. Веслей Д., Мелсон Дж., Стэнли П. Микробная бионагрузка при повторной обработке эндоскопов и оценка эффективности дезинфекции высокого уровня Cidex PA при использовании.Гастроэнтерол. Nurs. 1999; 22: 63-8.
  102. Chu NS, McAlister D, Antonoplos PA. Уровни естественной бионагрузки обнаруживаются на гибких желудочно-кишечных эндоскопах после клинического использования и ручной очистки. Гастроинтест. Endosc. 1998; 48: 137-42.
  103. Rutala WA, Weber DJ. Обработка эндоскопов: перспектива США. J. Hosp. Заразить. 2004; 56: S27-S39.
  104. Hanson PJ, Gor D, Clarke JR, et al. Загрязнение эндоскопов, используемых у больных СПИДом. Ланцет 1989; 2: 86-8.
  105. Hanson PJ, Gor D, Clarke JR и др.Извлечение вируса иммунодефицита человека с помощью фибробронхоскопов. Торакс 1991; 46: 410-2.
  106. Chaufour X, Дева А.К., Викери К. и др. Оценка дезинфекции и стерилизации многоразовых ангиоскопов на модели утиного гепатита В. J. Vasc. Surg. 1999; 30: 277-82.
  107. Cheung RJ, Ortiz D, DiMarino AJ, Jr. Практика эндоскопической обработки желудочно-кишечного тракта в США. Гастроинтест. Endosc. 1999; 50: 362-8.
  108. Американское общество эндоскопии желудочно-кишечного тракта. Изложение позиции: обработка гибких желудочно-кишечных эндоскопов.Гастроинтест. Endosc. 1996; 43: 541-6.
  109. Управление по санитарному надзору за качеством пищевых продуктов и медикаментов. Содержание и формат предварительного уведомления [510 (k] заявок на жидкие химические стерилизаторы / дезинфицирующие средства высокого уровня). [Эта ссылка больше не активна: www.fda.gov/cdrh/ode/397] 2000.
  110. Ураяма С., Козарек Р.А., Сумида С., Ральц С., Мерриам Л., Петигал П. Микобактерии и глутаральдегид: возможна ли дезинфекция эндоскопов на высоком уровне? Гастроинтест. Endosc. 1996; 43: 451-6.
  111. Джексон Дж., Леггетт Дж. Э., Уилсон Д. А., Гилберт Д. Н..Mycobacterium gordonae в оптоволоконных бронхоскопах. Am. J. Infect. Контроль 1996; 24: 19-23.
  112. Martiny H, Floss H, Zuhlsdorf B. Важность очистки для общих результатов обработки эндоскопов. J. Hosp. Заразить. 2004; 56: S16-S22.
  113. Alvarado CJ, Reichelderfer M. Руководство APIC по профилактике инфекций и контролю за ними в гибкой эндоскопии. Ассоциация профессионалов инфекционного контроля. Am. J. Infect. Контроль 2000; 28: 138-55.
  114. Общество медсестер и ассистентов гастроэнтерологов.Руководство по использованию дезинфицирующих и стерилизующих средств высокого уровня для обработки гибких желудочно-кишечных эндоскопов. Гастроэнтерол. Nurs. 2000; 23: 180-7.
  115. Общество медсестер и ассистентов гастроэнтерологов. Стандарты инфекционного контроля при переработке гибких желудочно-кишечных эндоскопов. Гастроэнтерол. Nurs. 2006; 29: 142-8.
  116. Нельсон Д.Б., Джарвис В.Р., Рутала В.А. и др. Многостороннее руководство по переработке гибких желудочно-кишечных эндоскопов. Инфекционный контроль Hosp Epidemiol 2003; 24: 532-537.
  117. Мартин М.А., Райхельдерфер М., 1991 и 1993 Комитет руководящих принципов APIC. Руководство APIC по профилактике и контролю инфекций в гибкой эндоскопии. Am. J. Infect. Контроль 1994; 22: 19-38.
  118. Рей Дж. Ф., Хальфон П., Ферин Дж. М., Хири Х., Массеефф М. Ф., Узан Д. Риск передачи вируса гепатита С при эндоскопии пищеварительной системы. Гастроэнтерол. Clin. Биол. 1995; 19: 346-9.
  119. Кронмиллер JR, Нельсон DK, Джексон DK, Ким CH. Эффективность традиционных методов эндоскопической дезинфекции и стерилизации против заражения Helicobacter pylori.Helicobacter 1999; 4: 198-203.
  120. Sartor C, Charrel RN, de Lamballerie X, Sambuc R, De Micco P, Boubli L. Оценка процедуры дезинфекции гистероскопов, зараженных вирусом гепатита C. Заразить. Control Hosp. Эпидемиол. 1999; 20: 434-6.
  121. Хэнсон П.Дж., Чедвик М.В., Гая Х., Коллинз СП. Исследование дезинфекции глутаровым альдегидом фибробронхоскопов, экспериментально зараженных Mycobacterium tuberculosis. J. Hosp. Заразить. 1992; 22: 137-42.
  122. Merighi A, Contato E, Scagliarini R, et al.Повышение качества эндоскопии желудочно-кишечного тракта: микробиологический надзор за дезинфекцией. Гастроинтест. Endosc. 1996; 43: 457-62.
  123. Bond WW. Обработка эндоскопов: проблемы и решения. В: Рутала В.А., изд. Дезинфекция, стерилизация и антисептика в здравоохранении. Champlain, New York: Polyscience Publications, 1998: 151–163.
  124. Дева А.К., Викери К., Цзоу Дж., Уэст Р.Х., Харрис Дж. П., Коссарт Я. Внедрение метода тестирования при использовании для оценки дезинфекции хирургических инструментов с использованием модели гепатита B у уток.J. Hosp. Заразить. 1996; 33: 119-30.
  125. Хэнсон П.Дж., Гор Д., Джеффрис Д.Д., Коллинз СП. Устранение ВИЧ с высоким титром из фиброоптических эндоскопов. Gut 1990; 31: 657-9.
  126. Wu MS, Wang JT, Yang JC и др. Эффективное уменьшение инфекции Helicobacter pylori после эндоскопии верхних отделов желудочно-кишечного тракта путем механической промывки эндоскопа. Гепатогастроэнтерология. 1996; 43: 1660-4.
  127. Киршке Д.Л., Джонс Т.Ф., Крейг А.С. и др. Загрязнение Pseudomonas aeruginosa и Serratia marcescens, связанное с производственным дефектом бронхоскопов.N. Engl. J. Med. 2003; 348: 214-20.
  128. Шринивасан А., Вольфенден Л.Л., Сонг X и др. Вспышка инфекции Pseudomonas aeruginosa, связанная с применением гибких бронхоскопов. N. Engl. J. Med. 2003; 348: 221-7.
  129. Качмарек Р.Г., Мур Р.М. мл., МакКрохан Дж. И др. Исследование фактической дезинфекции / стерилизации эндоскопов в медицинских учреждениях в нескольких штатах. Am. J. Med. 1992; 92: 257-61.
  130. Брэдли Ч.Р., Бабб-младший. Обеззараживание эндоскопа: автоматическое против ручного. J. Hosp.Заразить. 1995; 30: 537-42.
  131. Muscarella LF. Преимущества и недостатки автоматических гибких репроцессоров эндоскопов. Am. J. Infect. Контроль 1996; 24: 304-9.
  132. Muscarella LF. Автоматические гибкие репроцессоры эндоскопов. Гастроинтест. Endosc. Clin. N. Am. 2000; 10: 245-57.
  133. Альварадо С.Дж., Штольц С.М., Маки Д.Г. Нозокомиальные инфекции от зараженных эндоскопов: неисправная автоматическая промывка эндоскопов. Исследование с использованием молекулярной эпидемиологии. Am. J. Med. 1991; 91: 272С-280С.
  134. Фрейзер В.Дж., Джонс М., Мюррей П.Р., Медофф Г., Чжан И., Уоллес Р.Дж., мл.Загрязнение гибких волоконно-оптических бронхоскопов Mycobacterium chelonae, подключенных к автоматической машине для дезинфекции бронхоскопов. Am. Rev. Respir. Dis. 1992; 145: 853-5.
  135. Cooke RP, Whymant-Morris A, Umasankar RS, Goddard SV. Вода без бактерий для автоматических стирально-дезинфекционных машин: несбыточная мечта? J. Hosp. Заразить. 1998; 39: 63-5.
  136. Muscarella LF. Дежавю ... И снова? Важность сушки инструментов. Заразить. Control Hosp. Эпидемиол. 2000; 21: 628-9.
  137. Rutala WA, Weber DJ.Важность просвета в жидкостной химической стерилизации. Am. J. Infect. Контроль 1999; 20: 458-9.
  138. Дуайер Д.М., Кляйн Э.Г., Истре Г.Р., Робинсон М.Г., Нойман Д.А., Маккой Г.А. Инфекции Salmonella newport, передающиеся при оптоволоконной колоноскопии. Гастроинтест. Endosc. 1987; 33: 84-7.
  139. Wheeler PW, Lancaster D, Kaiser AB. Бронхолегочная перекрестная колонизация и инфекция, связанная с микобактериальным заражением отсасывающих клапанов бронхоскопов. J. Infect. Dis. 1989; 159: 954-8.
  140. Bond WW.Передача вируса через оптоволоконный эндоскоп: рекомендуемая дезинфекция. JAMA 1987; 257: 843-4.
  141. Линч Д.А., Портер С, Мерфи Л., Аксон АТ. Оценка четырех коммерческих автоматических стиральных машин для эндоскопов. Эндоскопия 1992; 24: 766-70.
  142. Bond WW. Дезинфекция и эндоскопия: микробиологические аспекты. J. Gastroenterol. Гепатол. 1991; 6: 31-6.
  143. Нельсон Д. Новые технологии дезинфекции эндоскопов: электролизная кислотная вода и одноразовые эндоскопические системы. Гастроинтест.Endosc. Clin. N. Am. 2000; 10: 319-28.
  144. Зильберман HD. Ненадувной стерильный тубус для введения гибкого назофаринголарингоскопа. Энн Отол, Ринол, Ларингол 2001; 110: 385-7.
  145. Kruse A, Rey JF. Рекомендации по очистке и дезинфекции при эндоскопии ЖКТ. Обновление 1999 г. Европейское общество эндоскопии желудочно-кишечного тракта. Эндоскопия 2000; 32: 77-80.
  146. Британское торакальное общество. Рекомендации Британского торакального общества по диагностической гибкой бронхоскопии. Торакс 2001; 56: 1-21.
  147. Ассоциация медсестер операционной. Рекомендуемые методы использования и ухода за эндоскопами. 2000 стандартов, рекомендуемых практик и руководств. Денвер, Колорадо: AORN, 2000: 243-7.
  148. Британское общество гастроэнтерологов. Очистка и дезинфекция оборудования для эндоскопии желудочно-кишечного тракта. Отчет рабочей группы Комитета эндоскопов Британского общества гастроэнтерологов. Gut 1998; 42: 585-93.
  149. Джексон ФВ, Болл МД. Устранение недостатков техники очистки и дезинфекции гибкого оптоволоконного сигмоидоскопа в семейных врачебных кабинетах и ​​кабинетах внутренней медицины.Arch. Fam. Med. 1997; 6: 578-82.
  150. Orsi GB, Filocamo A, Di Stefano L, Tittobello A. Итальянское национальное исследование процедур дезинфекции пищеварительной эндоскопии. Эндоскопия 1997; 29: 732-8; викторина 739-40.
  151. Ханиборн Д., Нойманн. Аудит практики бронхоскопии в Соединенном Королевстве: исследование соблюдения национальных руководств. Торакс 1997; 52: 709-13.
  152. Michele TM, Cronin WA, Graham NM, et al. Передача Mycobacterium tuberculosis с помощью волоконно-оптического бронхоскопа. Идентификация по отпечаткам ДНК.JAMA 1997; 278: 1093-5.
  153. Bronowicki JP, Venard V, Botte C и др. Передача вируса гепатита С от пациента к пациенту во время колоноскопии. N. Engl. J. Med. 1997; 337: 237-40.
  154. Аджертон Т., Валвей С., Гор Б. и др. Передача штамма Mycobacterium tuberculosis с высокой лекарственной устойчивостью (штамм W1). Вспышка в сообществе и внутрибольничная передача через зараженный бронхоскоп. JAMA 1997; 278: 1073-7.
  155. Управление по контролю за продуктами и лекарствами, Центры по контролю и профилактике заболеваний.Консультации FDA и CDC по вопросам общественного здравоохранения: инфекции от эндоскопов, неправильно обработанных автоматизированной системой обработки эндоскопов, Управление по санитарному надзору за качеством пищевых продуктов и медикаментов, Роквилл, Мэриленд. 1999.
  156. Нельсон ДБ, Muscarella LF. Актуальные вопросы обработки эндоскопов и инфекционного контроля во время эндоскопии желудочно-кишечного тракта. Всемирный журнал J Gastroenterol 2006; 12: 3953-64.
  157. Райли Р., Бинленд С., Бос Х. Установление срока годности гибких колоноскопов. Гастроэнтерол. Nurs. 2002; 25: 114-9.
  158. Rejchrt S, Cermak P, Pavlatova L, Mickova E, Bures J.Бактериологическое исследование эндоскопов после дезинфекции высокого уровня. Гастроинтест. Endosc. 2004; 60: 76-8.
  159. Willis C. Вода для полоскания эндоскопии без бактерий - реальная цель? Эпидемиол. Заразить. 2005; 134: 279-84.
  160. Хамфрис Х., МакГрат Х., Маккормик П.А., Уолш С. Качество воды для окончательного ополаскивания, используемой в моечно-дезинфекционных машинах для эндоскопов. J. Hosp. Заразить. 2002; 51: 151-3.
  161. Панг Дж., Перри П., Росс А., Forbes GM. Промывочная вода, не содержащая бактерий, для дезинфекции эндоскопов. Гастроинтест.Endosc. 2002; 56: 402-6.
  162. Леунг Дж., Валлеро Р., Уилсон Р. Наблюдение за культурами для мониторинга качества обработки желудочно-кишечного эндоскопа. Am. J. Gastroenterol. 2003; 98.
  163. Moses FM, Lee J. Наблюдение за культурами для мониторинга качества обработки желудочно-кишечного эндоскопа. Am. J. Gastroenterol. 2003; 98: 77-81.
  164. Tunuguntla A, Салливан MJ. Контроль качества гибкой эндоскопической дезинфекции с помощью микробиологических контрольных культур. Tennessee Med 2004; октябрь: 453-6.
  165. Muscarella LF. Применение отбора проб окружающей среды для гибкой обработки эндоскопов: важность мониторинга воды для ополаскивания. Заразить. Control Hosp. Эпидемиол. 2002; 23: 285-9.
  166. Fraser TG, Reiner S, Malcznski M, Yarnold PR, Warren J, Noskin GA. Холангиопанкреатография с множественной лекарственной устойчивостью Pseudomonas aeruginosa: неспособность обычных эндоскопических культур предотвратить вспышку. Инфекционный контроль Hosp Epidemiol 2004; 25: 856-9.
  167. Bond WW, Hedrick ER. Микробиологическое культивирование поверхностей окружающей среды и медицинских устройств.В: Isenberg HD, and M.J.R. Гилкрист, изд. Справочник по процедурам клинической микробиологии, раздел 11, Эпидемиологическая микробиология и микробиология инфекционного контроля. Вашингтон, округ Колумбия: Американское общество микробиологии, 1992: 11.10.1-11.10.9.
  168. Мюррей PR, барон EJ, Pfaller MA, Jorgensen JH, Yolken RH. Руководство по клинической микробиологии. В: Murray PR, Baron EJ, Pfaller MA, Jorgensen JH, Yolken RH, ред. Вашингтон, округ Колумбия: American Society for Microbiology Press, 2003.
  169. .
  170. Blob R, Kampf G. Тестовые модели для определения эффективности очистки с различными типами бионагрузки и ее клинической корреляции.J. Hosp. Заразить. 2004; 56 (доп.): S44-S48.
  171. Obee PC, Гриффит С.Дж., Купер Р.А., Кук Р.П., Беннион Н.Э., Льюис М. Мониторинг в реальном времени при управлении обеззараживанием гибких желудочно-кишечных эндоскопов. Am. J. Infect. Контроль 2005; 33: 202-6.
  172. Sciortino CV, Xia EL, Mozee A. Оценка нового подхода к оценке результатов обработки эндоскопов. Инфекционный контроль Hosp Epidemiol 2004; 25: 284-90.
  173. Мерфи К. Инактивированный глутаральдегид: Уроки инфекционного контроля.Am. J. Infect. Контроль 1998; 26: 159-60.
  174. Carsauw H, Debacker N. Вспомните пациентов после использования неактивной партии дезинфицирующего раствора Cidex в бельгийских больницах, Пятая международная конференция Общества больничных инфекций, Эдинбург, 15-18 сентября 2002 г. Общество больничных инфекций.
  175. Специальный комитет по инфекционному контролю при обращении с эндоскопическим оборудованием. Руководство по изготовлению лапароскопического инструментария. AORN J. 1980; 32: 65-6, 70, 74, 76.
  176. Тейлор Е.В., Мехтар С., Коуэн Р. Э., Фенели Р.Эндоскопия: дезинфицирующие средства и здоровье. Отчет о встрече, проведенной в Королевском колледже хирургов Англии, февраль 1993 г. J. Hosp. Заразить. 1994; 28: 5-14.
  177. Hulka JF, Wisler MG, Bruch C. Обсуждение: стерилизация лапароскопических инструментов. Med. Instrum. 1977; 11: 122-3.
  178. Corson SL, Block S, Mintz C, Dole M, Wainwright A. Стерилизация лапароскопов. Достаточно ли замачивания? J. Reprod. Med. 1979; 23: 49-56.
  179. Corson SL, Dole M, Kraus R, Richards L, Logan B. Исследования по стерилизации лапароскопа: II.J. Reprod. Med. 1979; 23: 57-9.
  180. Чан-Майерс Х., Макалистер Д., Антоноплос П. Уровни естественной бионагрузки, обнаруженные на медицинских устройствах с жестким просветом до и после очистки. Am. J. Infect. Контроль 1997; 25: 471-6.
  181. Rodrigues C, Mehta AC, Jha U, Bharucha M, Dastur FD, Udwadia TE. Нозокомиальная инфекция Mycobacterium chelonae в лапароскопической хирургии. Заразить. Control Hosp. Эпидемиол. 2001; 22: 474-5.
  182. Marshburn PB, Rutala WA, Wannamaker NS, Hulka JF. Сравнение газовой и паровой стерилизации собранного и разобранного лапароскопического оборудования.Микробиологические исследования. J. Reprod. Med. 1991; 36: 483-7.
  183. Bernhang AM. Пиоартроз клостридия после артроскопии. Артроскопия 1987; 3: 56-8.
  184. D’Angelo GL, Огилви-Харрис ди-джей. Септический артрит после артроскопии с анализом затрат и выгод антибиотикопрофилактики. Артроскопия 1988; 4: 10-4.
  185. Вебер DJ, Рутала, Вашингтон. Нозокомиальные глазные инфекции. В: Mayhall CG, ed. Заразить. Контроль и Госпиталь. Эпидемиол. Филадельфия: Lippincott Williams & Wilkins, 1999: 287-99.
  186. Rutala WA, Peacock JE, Gergen MF, Sobsey MD, Weber DJ. Эффективность госпитальных бактерицидных средств против аденовируса 8, частой причины эпидемического кератоконъюнктивита в медицинских учреждениях. Антимикробный. Агенты Chemother. 2006; 50: 1419-24.
  187. Саттар С.А., Спрингторп В.С., Карим Й., Лоро П. Химическая дезинфекция непористых неодушевленных поверхностей, экспериментально зараженных четырьмя патогенными вирусами человека. Эпидемиол. Заразить. 1989; 102: 493-505.
  188. Хронистер CL. Структурные повреждения тонометров Шиоца после дезинфекции растворами.Optom. Vis. Sci. 1997; 74: 164-6.
  189. Nagington J, Sutehall GM, Whipp P. Дезинфекция тонометра и вирусы. Br. J. Ophthalmol. 1983; 67: 674-6.
  190. Craven ER, Butler SL, McCulley JP, Luby JP. Стерилизация наконечника аппланационного тонометра для аденовируса типа 8. Офтальмология 1987; 94: 1538-40.
  191. Американская академия офтальмологии. Обновленные рекомендации для офтальмологической практики в отношении вируса иммунодефицита человека. Американская академия офтальмологии, Сан-Франциско, Калифорния, 1988.
  192. Pepose JS, Linette G, Lee SF, MacRae S. Дезинфекция тонометров Гольдмана против вируса иммунодефицита человека типа 1. Arch. Офтальмол. 1989; 107: 983-5.
  193. Ventura LM, Dix RD. Жизнеспособность вируса простого герпеса типа 1 на аппланационном тонометре. Am. J. Ophthalmol. 1987; 103: 48-52.
  194. Ку Д., Бувье Б., Уэсли М., Кортрайт П., Рейнгольд А. Эпидемический кератоконъюнктивит в офтальмологической клинике университетского медицинского центра; необходимость переоценки конструкции и дезинфекции инструментов.Заразить. Control Hosp. Эпидемиол. 1989; 10: 547-52.
  195. Джерниган Дж. А., Лоури Б. С., Хайден Ф. Г. и др. Аденовирусный эпидемический кератоконъюнктивит 8 типа в глазной клинике: факторы риска и меры борьбы. J. Infect. Dis. 1993; 167: 1307-13.
  196. Fritz S, Hust MH, Ochs C, Gratwohl I, Staiger M, Braun B. Использование латексного чехла для чреспищеводной эхокардиографии (TEE) вместо регулярной дезинфекции эхоскопа? Clin. Кардиол. 1993; 16: 737-40.
  197. Лоурентчук Н., Чемберлен М. Стерильный одноразовый тубус для гибких цитоскопов.Урология 2005; 66: 1310-3.
  198. Milki AA, Fisch JD. Утечка крышки влагалищного ультразвукового датчика: последствия для ухода за пациентом. Fertil. Стерил. 1998; 69: 409-11.
  199. Storment JM, Monga M, Blanco JD. Неэффективность латексных презервативов в предотвращении загрязнения головки трансвагинального ультразвукового датчика. Юг. Med. J. 1997; 90: 206-8.
  200. Hignett M, Claman P. Высокие показатели перфорации обнаружены в крышках эндовагинальных ультразвуковых датчиков до и после извлечения ооцитов для переноса эмбрионов in vitro.J. Assist. Репродукция. Genet. 1995; 12: 606-9.
  201. Эмис С., Радди М., Кибблер С.К., Экономидес Д.Л., Маклин А.Б. Оценка презервативов как зондов для трансвагинальной сонографии. J. Clin. Ультразвук 2000; 28: 295-8.
  202. Рукс В.Дж., Янси М.К., Элг С.А., Брюске Л. Сравнение тубусов для эндовагинальной сонографии. Акушерство. Гинеколь. 1996; 87: 27-9.
  203. Odwin CS, Fleischer AC, Kepple DM, Chiang DT. Крышки датчиков и дезинфицирующие средства для трансвагинальных датчиков. J. Diagnostic Med. Соно
.

Эффективность | Рекомендации по дезинфекции и стерилизации | Библиотека руководств | Инфекционный контроль

Микроорганизмы сильно различаются по своей устойчивости к химическим гермицидам и процессам стерилизации (рис. 1) 342 Механизмы внутренней устойчивости микроорганизмов к дезинфицирующим средствам различаются. Например, споры устойчивы к дезинфицирующим средствам, потому что оболочка споры и кора головного мозга действуют как барьер, микобактерии имеют восковую клеточную стенку, которая предотвращает проникновение дезинфицирующих средств, а грамотрицательные бактерии обладают внешней мембраной, которая действует как барьер для поглощения дезинфицирующих средств 341, 343-345 .Во всех стратегиях дезинфекции подразумевается, что наиболее устойчивые микробные субпопуляции контролируют время стерилизации или дезинфекции. То есть, чтобы уничтожить наиболее устойчивые типы микроорганизмов (например, бактериальные споры), пользователь должен использовать время воздействия и концентрацию гермицида, необходимую для полного уничтожения. За исключением прионов, споры бактерий обладают самой высокой врожденной устойчивостью к химическим гермицидам, за ними следуют кокцидии (например, Cryptosporidium ), микобактерии (например, Cryptosporidium ).g., M. tuberculosis ), нелипидные или мелкие вирусы (например, полиовирус и вирус Коксаки), грибы (например, Aspergillus, и Candida ), вегетативные бактерии (например, Staphylococcus, и Pseudomonas. ) и липидные или средние вирусы (например, герпес и ВИЧ). Бактерицидная устойчивость, проявляемая грамположительными и грамотрицательными бактериями, схожа, за некоторыми исключениями (например, P. aeruginosa , которая проявляет большую устойчивость к некоторым дезинфицирующим средствам) 369, 415, 416 . P. aeruginosa также значительно более устойчив к различным дезинфицирующим средствам в своем «естественном» состоянии, чем клетки, субкультивированные на лабораторных средах 415, 417 . Rickettsiae , Chlamydiae и микоплазма не могут быть помещены в эту шкалу относительной устойчивости, поскольку информация об эффективности бактерицидов против этих агентов ограничена 418 . Поскольку эти микроорганизмы содержат липиды и похожи по структуре и составу на другие бактерии, можно предположить, что они будут инактивированы теми же гермицидами, которые уничтожают липидные вирусы и вегетативные бактерии.Известным исключением из этого предположения является Coxiella burnetti , которая продемонстрировала устойчивость к дезинфицирующим средствам 419 .

.

ISDH: Ошибка - 404

К сожалению, запрошенная страница не найдена.

Департамент здравоохранения штата Индиана значительно улучшил наш веб-сайт!

Если вы перешли сюда через закладку или ссылку с внешнего веб-сайта, обратите внимание, что структура нашего веб-сайта недавно изменилась, и многие разделы были перемещены. Пожалуйста, исследуйте наш сайт с нашей домашней страницы.

Многие из нужных областей напрямую связаны с левой навигацией.Если вы не видите там того, что ищете,

  • Попробуйте использовать поле поиска вверху страницы, чтобы найти новые местоположения ваших любимых страниц.

Пожалуйста, найдите время, чтобы познакомиться с нами еще раз, поскольку мы считаем, что новая навигация и структура улучшат общее впечатление пользователя.

Если вы все еще не можете найти нужную информацию, обратитесь в программную область для этого раздела. См. Организационную схему в разделе «Контактная информация».

Наиболее часто просматриваемые страницы

/isdh/healthinfo/quick_faqs.htm -> http://www.in.gov/isdh/20209.htm

/isdh/form/communicable_forms.htm -> http://www.in.gov/isdh/19042.htm#Communicable_Disease

/isdh/publications/2002communicable_disease_ref_guide/index.htm -> http://www.in.gov/isdh/23291.htm

.

Смотрите также

Сделать заказ

Пожалуйста, введите Ваше имя
Пожалуйста, введите Ваш номер телефона
Пожалуйста, введите Ваше сообщение